高血糖大鼠蓝斑核神经原一氧化氮合酶的改变

2011-01-25 05:05孙永杰
中国实用医药 2011年3期
关键词:合酶一氧化氮高血糖

孙永杰

高血糖大鼠蓝斑核神经原一氧化氮合酶的改变

孙永杰

目的观察高血糖大鼠蓝斑核NOS阳性反应物的变化。方法用腹腔注射四氧嘧啶法建立高血糖大鼠动物模型。用酶组织化学和图像分析方法观察大鼠蓝斑核NOS细胞的变化。结果高血糖大鼠蓝斑核NOS细胞阳性反应物减弱(P<0.01)。结论NOS阳性反应物减少与高血糖的发生、发展有关。

高血糖;蓝斑核;一氧化氮合酶;大鼠

一氧化氮是一种神经递质,也是一种重要生理功能的信使分子,既溶于水又溶于脂,是非常活跃的化学物质,参与多种生理过程。一氧化氮系在一氧化氮合酶(nitric oxide synthase,NOS)催化下由L-精氨酸氧化产生,一氧化氮合酶是一氧化氮合成的关键因素[1],广泛存在于中枢神经系统。目前,已有许多研究表明,蓝斑核所含去甲肾上腺素能神经元群,通过上、下行投射,几乎终止于全脑和脊髓灰质各部,从而影响脑的整体活动,如:控制注意力水平;调节觉醒-睡眠周期;参与胃肠道和呼吸道反射;参与介导所在网状结构的心血管、血压和化学感受器反射,并对痛觉传递进行调制等[2]。但关于高血糖时蓝斑核内NOS的含量是否发生改变尚未见报道。

1 资料与方法

1.1 实验材料 雄性Wistar大鼠(中国医科大学动物室提供),NADPH-d、四硝基唑蓝(NBT)、TritonX-100(购于 Sigma

公司);四氧嘧啶(购于Sigma公司);LUZEX-F显微图像分析仪(日本,松下公司);日立H-600透射电镜。

1.2 实验动物分组 本实验选用雄性Wistar大鼠40只,体质量260~300 g,随机分成2组。正常对照组:20只。实验组:20只。

1.3 实验方法

1.3.1 高血糖大鼠模型制备 实验动物禁食12 h。实验组腹腔一次注射200 mg/kg四氧嘧啶,正常对照组注射等体积的0.9%氯化钠注射液。6周后取材。

1.3.2 组化标本制备 对实验动物用1%戊巴比妥钠(40 ml/kg)腹腔麻醉后开胸,经左心室70滴/min滴入1%肝素钠的0.9%氯化钠注射液500ml,同时剪开右心耳。继用0.1 mol/L磷酸盐缓冲液(PBS,pH=7.4)配制的固定液(含4%多聚甲醛)灌流固定。取出实验动物的大脑组织,放入含4%多聚甲醛PBS的固定液中进行后固定大约2 h,之后将实验动物的大脑组织切成薄片移入含20%蔗糖的PBS中。在4℃冰箱中存放,至组织薄片沉底,经水包埋,恒冷箱连续横切片,片厚20 μm。经OCT包埋,恒冷箱连续切片,片厚16 mm,-70℃保存备用。

1.3.3 尼氏染色 冰冻切片吹干,经PBS漂洗5min×3次,将切片置入1%甲苯胺蓝溶液中37℃孵育90min,取出后用蒸馏水冲洗,PBS漂洗5min×3次,梯度乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封片,光镜下观察。

1.3.4 一氧化氮合酶组织化学方法 染色方法:NOS酶组织化学染色:在2 g/LTritonX-100磷酸缓冲液中预孵育5~10 min(室温);在下列孵育液中反应2 h(37℃):NADPH-d 10 mg,四硝基唑蓝(NBT)5 mg ,TritonX-100 0.03 ml,用0.1 mol/L PBS新鲜配制成100 ml;用PBS终止反应、漂洗;梯度乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封片,光镜下观察。

1.4 统计学方法 采用SPSS11.5软件包进行统计分析,计量资料采用t检验。P<0.05表示差异有统计学意义。

2 结果

2.1 尼氏染色结果 正常对照组大鼠蓝斑核区的尼氏染色切片上,神经元数量较多,排列紧密,形态完整,泡浆内尼氏体丰富。实验组,正常神经元数量减少,细胞皱缩,有的溶解成碎片。

2.2 NOS酶组化结果 正常对照组和实验照组NOS阳性反应物分布于蓝斑核,多为锥体细胞,阳性反映物呈深兰色,分布在细胞质及突起,胞核不着色。实验组,NOS阳性细胞数量减少,其形态不同于正常NOS阳性细胞,细胞小,突起少,着色浅且大部分局限于细胞膜。见图1。

图1 高血糖大鼠蓝斑核区单位面积NOS阳性物平均灰度值

3 讨论

目前已知NOS有二类:原生型NOS(cNOS)和诱导型(iN-OS)[3]。在生理状态下cNOS参与各种活动的调节,其作用时间短,生成的一氧化氮少。iNOS在正常生理状态下表达较少,但在病理状态下,经某些细胞因子和内毒素等的诱导,表达增多,iNOS的作用时间长,可催化产生大量的一氧化氮。在实验中,我们观察到,大鼠蓝斑核NOS酶反应阳性细胞及纤维数量显著减少,结果提示NOS可能参与高血糖的病理生理过程,可作为神经元受损的标示物。

[1] Bolanos JP,Almeida A.Roles of nitric oxide in brain hypoxiaischemia.Biophys Acta,1999,1411:415-436.

[2] 柏数令.系统解剖学.人民卫生出版社,2008:345.

[3] Carthwoite J.Clutamate,nitric oxide and cell-cell signalling in the nervous system.Trends Neurosci,1991,14:60-67.

Investigation on the change of nitric oxide synthetase positive neurons in locus ceruleus of rats with hy-perglycemia

SUN Yong-jie.
Liaoning Health College of Vocational Technology Shen Yang 110101,China

ObjectiveTo observe the expression of nitric oxide synthetase(NOS)in Locus Ceruleusneurons with hyperglycemia.MethodsNADPH-d histochemical method was used.ResultsNOS positive neurons expressed in Locus Ceruleus and nomal neurons of 6 weeks old rats with hyperglycemia(DM)and normal rats(NC).There was significant difference in neurons between DM group and control group.ConclusionThere is a relationNOS positive neurons decrease in Locus Ceruleus of rats with hyperglycemia.

Hyperglycemia;Locus ceruleus;NOS;Rat

110101辽宁卫生职业技术学院

·临床医学·

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