miRNA在大肠癌中的作用△

2016-10-17 09:45唐林黄维康杨帆孟静岩
癌症进展 2016年2期
关键词:癌基因大肠癌耐药性

唐林 黄维康 杨帆 孟静岩

天津中医药大学,天津300193

miRNA在大肠癌中的作用△

唐林黄维康杨帆孟静岩#

天津中医药大学,天津300193

近年来,随着MicroRNA(miRNA)在大肠癌中作用的深入研究以及在大肠癌中调控机制变得更加清晰,miRNA的功能也得到更全面的了解。研究表明,miRNA在大肠癌中存在异常表达的情况,但是不同miRNA的异常表达对大肠癌的调控效果存在差异,有的可能发挥癌基因的作用,有的则可能发挥抑癌基因的作用。此外,与正常组织相比,同一个miRNA在大肠癌的不同时期也可能存在表达量完全相反的现象。异常表达的miRNA可能成为结直肠腺瘤或者大肠癌的诊断、预后以及治疗疗效的指标,检测血液循环中miRNA的表达可能成为一种精确度高、无创性的检测手段。在大肠癌治疗方面,miRNA可能对大肠癌细胞的耐药性存在影响。现从调控、诊断、预后及耐药四个方面,对miRNA与大肠癌的关系研究进行综述。

miRNA;大肠癌;调控;诊断;预后;耐药

世界卫生组织下属的国际癌症研究机构GLOBOCAN于2012年公布的最新数据显示,在全球范围内,大肠癌居男性恶性肿瘤发病率第三位,居女性恶性肿瘤发病率第二位;并且大肠癌的发病率存在地域间差异,发达国家大肠癌的发病率高于发展中国家。这可能与人们不健康的饮食、肥胖、吸烟有关[1]。从分子水平研究发现,大肠癌的发生是由于癌基因和抑癌基因的突变逐渐积累而成[2]。此外,某些癌基因或抑癌基因可能成为miRNA的靶基因,在miRNA的调控下发挥作用。

miRNA是一类单链非编码小RNA,其长度在22个核苷酸左右。miRNA通过调控相关基因的表达,进而在细胞增殖、分化、转移过程中发挥作用[3-5]。研究发现,在肿瘤发展和预后过程中,miRNA发挥不可忽视的作用[6-8]。因此,一些研究人员正探寻用于大肠癌诊断及预后判断的miRNA。还有研究试图运用靶向治疗的方法,作用于相关的miRNA来达到抑制或消除肿瘤的目的[9]。现将与大肠癌相关miRNA的研究进展进行归纳阐述,以期能为大肠癌的研究、诊断、治疗以及预防提供重要的新思路。

1 与大肠癌相关的miRNA

miRNA通过调控癌基因或抑癌基因的表达,在癌症中起到致癌作用或抑癌作用[10]。因此,miRNA可以分为致癌miRNA和抑癌miRNA两大类。在大肠癌的研究中,可以运用基因表达谱分析或者基因芯片技术筛选出表达异常的miRNA,进而研究其对转录后水平的调控作用[11-12]。常见与大肠癌相关的miRNA,见表1。

1.1促进大肠癌发展的miRNA

现研究发现,在大肠癌中高表达的miRNA可能促进细胞增殖、抑制细胞凋亡,又因促进细胞侵袭和转移,从而诱导大肠癌的发生和转移。Jahid等[13]发现,在老鼠肠腺癌、人Ⅰ/Ⅱ期原位大肠癌、大肠癌细胞系以及肿瘤干细胞中,miR-23a表达量均增加;分析其功能发现,miR-23a可以促进大肠癌的侵袭和转移。Valeri等[14]实验发现在动物模型和大肠癌患者中,miR-135b都呈高表达状态,这可能与APC、PTEN、p53等抑癌基因的缺失或突变有关;通过体内外实验发现,miR-135b的高表达会抑制细胞凋亡,促进细胞增殖。有多项研究发现,高表达的miR-21可以通过抑制抑癌基因PDCD4的表达,促进大肠癌的转化、生长和转移[15-17]。在大肠癌中还存在许多致癌的miRNA,如miR-17-5p[18]、miR-95[19]、miR-499-5p[20]等,以及一些尚未被发现的致癌miRNA。

1.2抑制大肠癌发展的miRNA

大量研究表明,大肠癌中低表达的miRNA可能具有抑癌基因的作用。let-7是人类细胞或组织中发现较早的、存在较为广泛的miRNA。let-7a是let-7家族的一员。有研究发现,与正常组织相比,let-7a在肿瘤组织(包括大肠癌)中呈现低表达状态,增加let-7a的表达量将会抑制肿瘤细胞的生长[21]。Long等[22]分别检测了人大肠癌组织和大肠癌细胞系。结果发现miR-138均表达下降;体内外实验发现,异位表达miR-138会抑制大肠癌的侵袭和转移。Ke等[5]研究发现,抑癌基因APC的缺失可能导致miR-224的低表达,异位表达miR-224会降低大肠癌细胞的转移能力,但是对细胞增殖的影响较小。此外,研究发现miR-139[23]、miR-143[24-25]、miR-145[26]、miR-342[27]、miR-365[28]、miR-497[29]、miR-638[30]等多种miRNA在大肠癌中都呈现低表达,并从不同的方面抑制大肠癌的发展和转移。从以上多项研究可以得知低表达的miRNA抑制大肠癌发展和转移的机制不尽相同。通过不断地探寻和挖掘潜在抑制大肠癌发展的miRNA,可能为抑制大肠癌发展和转移提供新的作用靶点。

表1 与大肠癌相关的miRNA

2 miRNA在大肠癌筛查诊断中的作用

大肠癌的筛查有助于早期发现肿瘤,是降低大肠癌死亡率的关键。Yang等[31]研究美国1976—2009年大肠癌筛查情况与大肠癌发病率之间的关系发现,随着纳入癌症筛查项目的人数增多,大肠癌的发病率出现大幅度下降,并估算这期间通过大肠癌筛查,成功预防了236 000~550 000例大肠癌的发生。因此可以看出大肠癌筛查的重要性。

Du等[32]通过Meta分析发现,在大肠癌早期诊断中,miR-21(AUC=0.867)比miR-92a(AUC= 0.803)诊断率更高;并通过进一步实验说明了miR-21在血浆中的高表达有可能成为早期大肠癌诊断的生物指标。Kanaan等[33]为探究循环中miRNA作为结直肠腺瘤生物标志物的潜在应用价值,采用微流控阵列技术在筛查组筛查380个miRNA的表达情况,结果发现一组血清miRNA组合(miR-532-3p、miR-331、miR-195、miR-17、miR-142-3p、miR-15b、miR-532、miR-652)能够准确地区分结直肠腺瘤与正常对照[AUC=0.868(95%CI 0.76~0.98)];miR-431、miR-15b和miR-139-3p这三个miRNA组合则可以很好地将结直肠癌与正常对照区别开[AUC=0.896(95%CI 0.78~1.0)]。这些实验结果表明血浆miRNA是检测结直肠腺瘤和大肠癌的有效生物指标。Zeng等[34]采用Meta分析方法研究了19篇文章的24项研究,其中包括1558例大肠癌患者和1085例对照患者,经过亚组和回归分析显示,多种miRNA[AUC=0.92(95%CI 0.89~0.94)]比单种miRNA[AUC=0.84(95%CI 0.81~0.87)]预测大肠癌的准确性更高;此外还发现,在通过检测血液循环中miRNA的方法来筛查大肠癌时,选用血清[AUC=0.92(95%CI 0.89~0.94)]作为检测基质可能比血浆[AUC=0.87(95%CI 0.84~0.90)]效果更好。

对于异常表达miRNA是否可以作为大肠癌诊断的标志物这一问题,学者们从不同的方面进行了研究和探讨,虽然研究结果可能存在差异性,但是总体研究的趋势均是miRNA在大肠癌诊断中存在价值。至于选用何种检测手段准确性更高、依从性更好,还有待进一步研究确定。

3 miRNA在判断大肠癌预后中的作用

miRNA表达的稳定性和差异性已经被人们所认知。近年来,研究人员通过分析肿瘤组织中一个或多个异常表达的miRNA,来探寻可能存在的大肠癌预后标志物。Chu等[35]调查miR-630在大肠癌中的表达模式以及对预后评估的价值,通过采用206例大肠癌患者肿瘤组织和邻近正常组织比较发现,miR-630在肿瘤组织中表达增高;在大肠癌患者中,miR-630高表达的患者比低表达的患者总生存率要低,因此推断miR-630可能作为大肠癌患者预后的生物标志物。但有的miRNA在术前和术后表达情况截然相反。Yang等[36]检测分析miRNA-29c与大肠癌患者术后复发情况之间的关系,发现早期复发患者血清内的miRNA-29c水平要明显高于没有早期复发患者的miRNA-29c水平,但miRNA-29c在大肠癌组织中的表达情况与血清检测结果正好相反,这种现象存在的原因尚不清楚,研究者猜测术后患者预后越差,miRNA-29c水平越高,这种现象可能是机体的一种自我防御机制的体现。

Jinushi等[37]研究发现人乳脂肪球EGF因子蛋白(MFGE8)的表达水平在切除大肠癌组织的患者中比未切除患者明显降低;此外,评估大肠癌患者体内miRNA表达水平与总生存率的关系,利用血浆和甲醛水溶液固定石蜡包埋的组织样品检测相关miRNA(包括miR-16、miR-21、miR-26a、miR-34a、miR-98、miR-101-3p、miR-101-5p、miR-124-5p、miR-126-3p、miR-126-5p、miR-210、miR-217和miR-630),发现高表达的miR-26a和低表达的miR-124-5p与低生存率有关,因此推测联合检测血浆中MFGE8、miR-26a和miR-124-5p表达水平,可以有助于判断大肠癌患者预后的情况。

4 miRNA对大肠癌耐药性的影响

目前化学疗法常被作为恶性肿瘤的辅助疗法,但由于部分肿瘤细胞对化疗药物存在耐药性,易导致肿瘤复发。miRNA在大肠癌发生发展中发挥着重要的调控作用。因此,许多研究从miRNA的角度对大肠癌耐药性问题展开了探索研究。

转录因子FOXO3a与FOXM1均属于叉头框(forkhead box,FOX)转录因子蛋白家族的一员,但是二者在肿瘤和DNA损伤修复中的作用相反。FOXO3a具有抑制肿瘤和抑制DNA损伤修复的作用,而FOXM1则有较强的致癌作用,并在肿瘤耐药细胞中高表达,与肿瘤细胞耐药存在相关性[38]。通过体内外实验发现,miR-153可以促进大肠癌耐药性增加,其耐药性机制可能是直接抑制FOXO3a表达所致。后期试验也显示在大肠癌样本中miR-153与FOXO3a的表达呈现负相关[39]。另一体外实验发现,miR-320可能通过抑制FOXM1的表达,增强人大肠癌细胞对化疗药的敏感性[40]。另有研究发现,miR-17-5p可能通过抑制PTEN的表达来促进大肠癌患者的化疗耐药[18]。miR-145可能作为E3泛素连接酶(RAD18)的抑制剂,改善化疗后大肠癌细胞的耐药性[41]。

5 小结

miRNA在转录后水平调节基因表达,一个miRNA可以调控多个靶基因,同时多个miRNA也可以作用于同一个靶基因。miRNA通过调控相关靶基因,在细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭中发挥重要作用。由于miRNA存在表达差异性,使得miRNA有可能作为大肠癌早期临床诊断及预后的分子标志物。在治疗方面,miRNA可能直接或间接地影响癌细胞对化疗药物的敏感性。miRNA对大肠癌的调控是一个复杂的网络,之前的研究使我们对miRNA与大肠癌的关系有了一定的了解和认识,但仍有许多问题值得进一步发现和深入研究。

[1]Torre LA,Bray F,Siegel RL,et al.Global cancer statistics,2012[J].CACancer J Clin,2015,65(2):87-108.

[2]Sjöblom T,Jones S,Wood LD,et al.The consensus coding sequences of human breast and colorectal cancers[J].Science,2006,314(5797):268-274.

[3]Croce CM,Calin GA.miRNAs,cancer,and stem cell division[J].Cell,2005,122(1):6-7.

[4]Bartel DP.MicroRNAs:genomics,biogenesis,mechanism,and function[J].Cell,2004,116(2):281-297.

[5]Ke TW,Hsu HL,Wu YH,et al.MicroRNA-224 suppresses colorectal cancer cell migration by targeting Cdc42[J].Dis Markers,2014(2014):617150.

[6]Zhang ZL,Bai ZH,Wang XB,et al.miR-186 and 326 predict the prognosis of pancreatic ductal adenocarcinoma and affect the proliferation and migration of cancer cells[J]. PLoS One,2015,10(3):e118814.

[7]Tejero R,Navarro A,Campayo M,et al.miR-141 and miR-200c as markers of overall survival in early stage non-small cell lung cancer adenocarcinoma[J].PLoS One,2014,9(7):e101899.

[8]Hanahan D,Weinberg RA.Hallmarks of cancer:the next generation[J].Cell,2011,144(5):646-674.

[9]Cheng CJ,Bahal R,Babar IA,et al.MicroRNA silencing for cancer therapy targeted to the tumour microenvironment[J].Nature,2015,518(7537):107-110.

[10]Schetter AJ,Okayama H,Harris CC.The role of microRNAs in colorectal cancer[J].Cancer J,2012,18(3):244-252.

[11]Chang KH,Mestdagh P,Vandesompele J,et al.MicroRNA expression profiling to identify and validate reference genes forrelativequantificationincolorectalcancer[J].BMCCancer,2010(10):173.

[12]Arndt GM,Dossey L,Cullen LM,et al.Characterization of global microRNA expression reveals oncogenic potential of miR-145 in metastatic colorectal cancer[J].BMC Cancer,2009(9):374.

[13]Jahid S,Sun J,Edwards RA,et al.miR-23a promotes the transition from indolent to invasive colorectal cancer[J]. Cancer Discov,2012,2(6):540-553.

[14]Valeri N,Braconi C,Gasparini P,et al.MicroRNA-135b promotes cancer progression by acting as a downstream effector of oncogenic pathways in colon cancer[J].Cancer Cell,2014,25(4):469-483.

[15]Allgayer H.Pdcd4,a colon cancer prognostic that is regulated by a microRNA[J].Crit Rev Oncol Hematol,2010,73(3):185-191.

[16]Fassan M,Pizzi M,Giacomelli L,et al.PDCD4 nuclear loss inversely correlates with miR-21 levels in colon carcinogenesis[J].Virchows Arch,2011,458(4):413-419.

[17]Peacock O,Lee AC,Cameron F,et al.Inflammation and MiR-21 pathways functionally interact to downregulate PDCD4 in colorectal cancer[J].PLoS One,2014,9(10):e110267.

[18]Fang L,Li H,Wang L,et al.MicroRNA-17-5p promotes chemotherapeutic drug resistance and tumour metastasis of colorectal cancer by repressing PTEN expression[J]. Oncotarget,2014,5(10):2974-2987.

[19]Huang Z,Huang S,Wang Q,et al.MicroRNA-95 promotes cell proliferation and targets sorting Nexin 1 in human colorectal carcinoma[J].Cancer Res,2011,71(7):2582-2589.

[20]Liu X,Zhang Z,Sun L,et al.MicroRNA-499-5p promotes cellular invasion and tumor metastasis in colorectal cancer by targeting FOXO4 and PDCD4[J].Carcinogenesis,2011,32(12):1798-1805.

[21]Wang F,Zhang P,Ma Y,et al.NIRF is frequently upregulated in colorectal cancer and its oncogenicity can be suppressed by let-7a microRNA[J].Cancer Lett,2012,314(2):223-231.

[22]Long L,Huang G,Zhu H,et al.Down-regulation of miR-138 promotes colorectal cancer metastasis via directly targeting TWIST2[J].J Transl Med,2013(11):275.

[23]Guo H,Hu X,Ge S,et al.Regulation of RAP1B by miR-139 suppresses human colorectal carcinoma cell proliferation[J].Int J Biochem Cell Biol,2012,44(9):1465-1472.

[24]Gregersen LH,Jacobsen A,Frankel LB,et al.MicroRNA-143 down-regulates Hexokinase 2 in colon cancer cells[J]. BMC Cancer,2012(12):232.

[25]Zhang Y,Wang Z,Chen M,et al.MicroRNA-143 targets MACC1 to inhibit cell invasion and migration in colorectal cancer[J].Mol Cancer,2012(11):23.

[26]Xu Q,Liu LZ,Qian X,et al.MiR-145 directly targets p70S6K1 in cancer cells to inhibit tumor growth and angiogenesis[J].Nucleic Acids Res,2012,40(2):761-774.

[27]Wang H,Wu J,Meng X,et al.MicroRNA-342 inhibits colorectal cancer cell proliferation and invasion by directly targeting DNA methyltransferase 1[J].Carcinogenesis,2011,32(7):1033-1042.

[28]Nie J,Liu L,Zheng W,et al.microRNA-365,down-regulated in colon cancer,inhibits cell cycle progression and promotes apoptosis of colon cancer cells by probably targeting Cyclin D1 and Bcl-2[J].Carcinogenesis,2012,33(1):220-225.

[29]GuoST,JiangCC,WangGP,etal.MicroRNA-497targetsinsulin-likegrowthfactor1receptorandhasatumoursuppressive role in human colorectal cancer[J].Oncogene,2013,32(15):1910-1920.

[30]Ma K,Pan X,Fan P,et al.Loss of miR-638 in vitro promotes cell invasion and a mesenchymal-like transition by influencing SOX2 expression in colorectal carcinoma cells[J].Mol Cancer,2014(13):118.

[31]Yang DX,Gross CP,Soulos PR,et al.Estimating the magnitude of colorectal cancers prevented during the era of screening:1976 to 2009[J].Cancer,2014,120(18):2893-2901.

[32]Du M,Liu S,Gu D,et al.Clinical potential role of circulating microRNAs in early diagnosis of colorectal cancer patients[J].Carcinogenesis,2014,35(12):2723-2730.

[33]Kanaan Z,Roberts H,Eichenberger MR,et al.A plasma microRNA panel for detection of colorectal adenomas:a step toward more precise screening for colorectal cancer[J].Ann Surg,2013,258(3):400-408.

[34]Zeng W,Tu Y,Zhu Y,et al.Predictive power of circulating miRNAs in detecting colorectal cancer[J].Tumour Biol,2015,36(4):2559-2567.

[35]Chu D,Zheng J,Li J,et al.MicroRNA-630 is a prognostic marker for patients with colorectal cancer[J].Tumour Biol,2014,35(10):9787-9792.

[36]Yang IP,Tsai HL,Huang CW,et al.The functional significance of microRNA-29c in patients with colorectal cancer:a potential circulating biomarker for predicting early relapse[J].PLoS One,2013,8(6):e66842.

[37]Jinushi T,Shibayama Y,Kinoshita I,et al.Low expression levels of microRNA-124-5p correlated with poor prognosis in colorectal cancer via targeting of SMC4[J].Cancer Med,2014,3(6):1544-1552.

[38]Nestal de Moraes G,Bella L,Zona S,et al.Insights into a critical role of the FOXO3a-FOXM1 axis in DNA damage response and genotoxic drug resistance[J].Curr Drug Targets,2016,17(2):164-177.

[39]Zhang L,Pickard K,Jenei V,et al.miR-153 supports colorectal cancer progression via pleiotropic effects that enhance invasion and chemotherapeutic resistance[J].Cancer Res,2013,73(21):6435-6447.

[40]Wan LY,Deng J,Xiang XJ,et al.miR-320 enhances the sensitivity of human colon cancer cells to chemoradiotherapy in vitro by targeting FOXM1[J].Biochem Biophys Res Commun,2015,457(2):125-132.

[41]Liu RL,Dong Y,Deng YZ,et al.Tumor suppressor miR-145 reverses drug resistance by directly targeting DNA damage-related gene RAD18 in colorectal cancer[J].Tumour Biol,2015,36(7):5011-5019.

R735.3

A

10.11877/j.issn.1672-1535.2016.14.02.12

2015-07-28)

国家自然青年基金(81403301);天津市科技计划项目(12ZCDZSY16800)

(corresponding author),邮箱:mengjy@163.com

猜你喜欢
癌基因大肠癌耐药性
长丝鲈溃烂症病原分离鉴定和耐药性分析
婴幼儿感染中的耐药菌分布及耐药性分析
WHO:HIV耐药性危机升级,普及耐药性检测意义重大
腺病毒载体介导的抑癌基因LRIG1对PC-3细胞生物学特性的影响
血必净在用于大肠癌合并肠梗阻术后ICU脓毒症中的效果
大肠癌组织中EGFR蛋白的表达及临床意义
FAP与E-cadherinN-cadherin在大肠癌中的表达及相关性研究
探讨抑癌基因FHIT在皮肤血管瘤中的表达意义
美洲大蠊逆转肝癌多药耐药性的研究
抑癌基因WWOX在口腔肿瘤的研究进展