颅内动脉瘤患者手术前后血清miR-126、miR-125b表达变化及其临床意义

2021-12-24 06:00王静静李晓东
临床误诊误治 2021年12期
关键词:引物血清血管

鄢 伟,王静静,李晓东

颅内动脉瘤是引起蛛网膜下腔出血的重要原因,具有较高的致残率和病死率[1-2]。因此,研究颅内动脉瘤的病理生理机制,对预防颅内动脉瘤具有重要意义。相关研究显示,血管生成、细胞外基质合成及降解与颅内动脉瘤的发生密切相关[3]。而血管内皮生长因子(VEGF)和基质金属蛋白酶-9(MMP-9)是关键调节因子。microRNA(miRNA)是非编码小分子RNA,可调控靶基因的表达[4]。miR-126基因位于9q34.3,可调节血管内皮细胞功能[5]。另外,血管平滑肌细胞异常可引起血管壁重塑,导致动脉瘤发生[6]。研究发现,miR-125b能调控血管平滑肌细胞表型转化,与动脉瘤发生相关[7]。也有基础研究发现,miR-126、miR-125b可通过调控VEGF及MMP-9参与疾病的发生[8]。但二者在颅内动脉瘤患者外周血中的表达及与临床特征、预后、VEGF、MMP-9关系的报道较少,因此本研究对此进行分析,旨在为临床治疗提供参考,现报告如下。

1 资料与方法

1.1一般资料 收集2018年8月—2020年8月于我院行手术治疗的104例颅内动脉瘤的临床资料,并设为观察组,其中男60例,女44例;年龄35~80(42.16±5.77)岁。①纳入标准:均符合颅内动脉瘤诊断标准[9],并经脑血管造影确诊;年龄30~80岁;既往无手术或药物治疗史,且颅内动脉瘤未破裂;临床资料完整。②排除标准:合并严重器质性疾病者;合并恶性肿瘤者;有严重头部外伤史;临床资料不完整。对观察组进行6个月的随访,根据不同预后分为生存组86例和死亡组18例。另选取同期进行体检的健康者100例作为对照组,其中男62例,女38例;年龄35~75(41.98±5.70)岁。观察组和对照组性别、年龄比较差异无统计学意义(P>0.05),具有可比性。本研究经医院医学伦理委员会批准执行。

1.2方法

1.2.1治疗方法:颅内动脉瘤患者均行显微镜外科手术治疗,取平卧位,暴露穿刺部位,取单侧翼点入路,显微镜下解剖外侧裂池,导出脑脊液,显露载瘤动脉,细心解剖瘤颈,采用动脉瘤夹夹闭动脉血管;可临时阻断处理载瘤动脉,0.9%氯化钠注射液冲洗脑池,罂粟碱明胶海绵包裹载瘤动脉。手术完成后及时中和肝素,给予10 mg/100 ml尼莫地平注射液2~3 ml/h持续静脉泵入24 h,连续用药2周。同时采用我院自行设计的调查表收集患者一般资料。

1.2.2血清miR-126、miR-125b表达测定:观察组入院后第1天和术后第7天采集晨起空腹静脉血5 ml,对照组采集体检日晨起空腹静脉血5 ml,均以4000 r/min离心10 min,留取上清-80 ℃冰箱保存。取200 μl样品,应用Trizol法提取血清中总RNA,用异丙醇沉淀总RNA后75%乙醇洗涤,8000 r/min离心5 min,弃上清,室温干燥,50 μl的DEPC水溶解,NaroDrop检测RNA溶液的浓度及纯度,OD260/OD280为1.8~2.1。以总RNA为模板,逆转录合成cDNA,反应条件:37 ℃ 16 min,84 ℃ 6 s。qRT-PCR总反应体系20 μl,模板cDNA 1 μl,Taq聚合酶0.2 μl、正向及反向引物各1 μl、2×SYBRGreenmix 1 μl及20 mmol/L的dNTPs 1 μl,无RNA酶水14.8 μl。反应条件:96 ℃ 2 min,96 ℃ 15 s,62 ℃ 30 s,70 ℃ 10 s,共40个循环。miR-126引物正向:5'-ACACTCCAGCTGGGTCGTACCGTGAGTAAT-3',反向:5'-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGAGCGCATTAT-3';miR-125b引物正向:5'-GCCGTAAAGTGCTGACAGT-3',反向:5'-GTGCAGGGTCCGAGGTAT-3';内参基因U6引物正向:5'-CTCGCTTCGGCAGCACA-3',反向:3'-AACGCTTCACGAATTTGCGT-5'。结果采用相对定量法表示,目的基因miR-126、miR-125b的表达分别采用2-ΔΔCt法计算。

1.2.3血清MMP-9、VEGF水平测定:采用酶联免疫吸附试验检测血清MMP-9、VEGF水平,试剂盒由北京博尔迈生物技术有限公司提供,严格按照说明书进行操作。

1.3观察指标 ①记录观察组手术前后及对照组血清miR-126、miR-125b表达及VEGF、MMP-9水平;②观察术前血清miR-126、miR-125b表达与临床特征的关系;③记录生存组和死亡组术后血清miR-126、miR-125b表达水平;④分析术前血清miR-126、miR-125b与VEGF、MMP-9的相关性。

2 结果

2.1血清miR-126、miR-125b表达比较 观察组术前和术后血清miR-126表达均高于对照组,miR-125b表达均低于对照组(P<0.05);观察组术后血清miR-126表达低于术前,miR-125b表达高于术前(P<0.05)。见表1。

表1 颅内动脉瘤患者和健康者两组血清miR-126、miR-125b表达比较

2.2血清VEGF、MMP-9水平比较 观察组术前和术后血清VEGF、MMP-9水平均高于对照组(P<0.05);观察组术后血清VEGF、MMP-9水平低于术前(P<0.05)。见表2。

表2 颅内动脉瘤患者和健康者两组血清VEGF、MMP-9水平比较

2.3术前血清miR-126、miR-125b表达与颅内动脉瘤患者临床特征关系 术前血清miR-126、miR-125b表达与年龄、性别、动脉瘤形态、动脉瘤位置无明显关系(P>0.05),而与动脉瘤数目、动脉瘤直径有关(P<0.05,P<0.01)。见表3。

表3 术前血清miR-126、miR-125b表达与颅内动脉瘤患者临床特征关系

2.4不同预后颅内动脉瘤患者术后血清miR-126、miR-125b表达比较 生存组术后血清miR-126表达低于死亡组,miR-125b表达高于死亡组(P<0.01)。见表4。

表4 不同预后颅内动脉瘤患者术后血清miR-126、miR-125b表达比较

2.5术前血清miR-126、miR-125b表达与VEGF、MMP-9的相关性 颅内动脉瘤患者术前血清miR-126表达与VEGF、MMP-9呈正相关(r=0.381、0.369,P均<0.001),miR-125b表达与VEGF、MMP-9呈负相关(r=-0.364、-0.405,P均<0.001)。见图1。

3 讨论

miRNA可调控人体的生长发育,且由于其表达稳定,已成为重要的生物学标志物[10]。研究发现,颅内动脉瘤患者存在异常miRNA表达谱,且生物学信息表明,miRNA可通过调节内皮细胞凋亡、平滑肌细胞增殖和迁移等方式参与颅内动脉瘤的发病机制[11]。miR-126可调控血管细胞黏附分子的表达,并影响血管内皮细胞增殖,参与血管生成和重塑[12]。本研究结果显示,观察组术前血清miR-126表达高于对照组,表明miR-126可能参与颅内动脉瘤发生发展,原因为颅内动脉瘤可促进血管生成,进而使miR-126高表达。miR-125是高度保守的miRNA家族,其异常表达与炎症、免疫等密切相关[13]。研究表明,miR-125b在腹主动脉瘤中表达下调[14]。本研究结果显示,观察组术前血清miR-125b表达低于对照组,考虑与长链非编码RNA对miR-125b的抑制作用有关。另外,观察组术后血清miR-126表达低于术前,miR-125b表达高于术前,提示手术治疗可改善患者血清miR-126、miR-125b表达。同时本研究显示,观察组血清miR-126、miR-125b表达与动脉瘤数目、动脉瘤直径有关,其原因可能是颅内动脉瘤使miR-125b表达降低,导致MMP-9水平升高,MMP-9降低颅内动脉血管弹性,进而导致动脉瘤数目、直径增大;miR-126可促进VEGF生成,从而降低动脉血管弹性,导致动脉瘤数目和直径增大。本研究还发现,生存组术后血清miR-126表达低于死亡组,miR-125b表达高于死亡组,提示术后血清miR-126、miR-125b表达可为预后评估提供参考。

目前,有学者认为颅内动脉瘤是由动脉血管壁缺陷和颅内压增高引起的[15]。GUO等[16]研究发现,VEGF、MMP-9参与颅内动脉瘤的发生。MMP-9高表达会加速细胞外基质降解,导致血管外膜纤维连接薄弱,加速动脉瘤形成。VEGF可促进MMP-9激活,并引起尿激酶型纤溶酶表达上调,进而发挥促细胞外基质降解作用[17-18]。本研究显示,观察组术前血清VEGF、MMP-9水平高于对照组,提示VEGF、MMP-9可能参与颅内动脉瘤发生;观察组术后血清VEGF、MMP-9水平低于术前,提示手术可改善患者血清VEGF、MMP-9水平。另外,Spearman相关分析显示,术前血清miR-126表达与VEGF、MMP-9呈正相关,miR-125b表达与VEGF、MMP-9呈负相关,提示血清miR-126表达升高和miR-125b表达降低均可升高VEGF、MMP-9。但本研究纳入样本量少且随访时间较短,可能影响结论,下一步将扩大样本量并延长随访时间,以期更好地为临床提供参考。

综上所述,血清miR-126、miR-125b在颅内动脉瘤患者中存在异常表达,且与动脉瘤数目、直径、预后及VEGF、MMP-9水平具有密切关联。

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