基于PCR-HRM 的水稻氮高效基因NRT1.1B功能标记开发及应用

2023-09-13 02:47房文文王海凤郭涛薛芳姜艳芳张焕霞张士永
山东农业科学 2023年8期
关键词:粳稻氮肥分型

房文文王海凤郭涛薛芳姜艳芳张焕霞张士永

(山东省农业科学院湿地农业与生态研究所/山东省水稻工程技术研究中心,山东济南 250100)

水稻作为重要的粮食作物,稻谷的稳产与增产对粮食安全至关重要[1]。 氮素是水稻需求量最大的营养元素,也是制约水稻产量的关键因子[2]。 化肥尤其是氮肥的施用对水稻增产和改善稻米品质起了重要作用。 但近年来,氮肥施用过量已成为水稻生产中普遍存在的问题[3-4],对生态环境造成了严重破坏[5]。 因此,培育养分高效型水稻新品种是解决这一问题的关键[6]。

研究表明,籼稻的氮肥利用率显著高于粳稻[7-8]。 培育和选育氮肥利用率高的粳稻品种是困扰育种工作者的难题。 Hu 等[9]研究揭示了籼、粳稻亚群氮肥利用差异的遗传基础,发现硝酸盐转运蛋白基因NRT1.1B单碱基变异是导致籼、粳稻间氮肥利用效率差异的主要原因,将籼型NRT1.1B导入粳稻能大幅度提高其氮利用效率,即在氮肥减半的条件下,产量较对照增加30%~33%,氮肥利用效率提高30%;在正常施肥条件下,增产8%~15%,氮肥利用效率提高约10%。

基因序列比对发现,籼稻中NRT1.1B基因编码区第980 位碱基为T,而其在粳稻中等位基因碱基为C,从而使编码蛋白的第327 位氨基酸分别为蛋氨酸和苏氨酸[9]。 根据NRT1.1B基因变异位点,方琳等[10]开发了特异性功能标记;牛付安等[11]开发了KASP 标记,并开展了氮高效粳稻育种。 本研究根据NRT1.1B基因的SNP 位点开发了一个用于HRM 检测方法的分子标记,并经测序方法验证标记的正确性,然后用其对78 份山东省地方品种进行NRT1.1B基因分型鉴定,为培育氮高效水稻新品种提供技术支持。

1 材料与方法

1.1 试验材料

水稻材料包括NRT1.1B材料NM73、对照品种日本晴及78 份山东省地方品种。 NM73 由山东省农业科学院湿地农业与生态研究所李平波博士提供,其他水稻材料均由山东省种质资源团队收集和保存,以常规方法栽培。

试剂及仪器: 十六烷基三甲基溴化铵(CTAB),购于生工生物工程(上海)股份有限公司;PCR 试剂,北京全式金生物技术(TransGen Biotech) 有限公司;EvaGreen qPCR 核酸染料,美国Biotium 公司。 SPX 智能型生化培养箱、RXZ-500C-LED 人工气候培养箱,宁波江南仪器厂;BCD-290W 型立式冰箱,青岛海尔股份有限公司;罗氏LightCycler96 实时荧光定量PCR 仪,Roche 公司。

1.2 NRT1.1B 基因序列分析及标记开发

对NRT1.1B基因序列进行分析,利用NRT1.1B与其等位基因及对照品种日本晴中的序列差异,应用Oligo 7 软件,根据差异的SNP 设计引物对。 引物均由华大基因公司合成。

1.3 DNA 提取、PCR 扩增及HRM 检测

采用CTAB 法[12]提取水稻样品的基因组DNA。 10 μL PCR 反应体系:2×EasyTaq®PCR SuperMix 母液5 μL,模板DNA 3 μL,正反向引物各0.2 μL(0.1 mmol/L),20×Evagreen 0.125 μL,ddH2O 1.475 μL。 PCR 扩增程序:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性10 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸20 s,共40个循环;最后72 ℃延伸10 min 后4 ℃保存。 扩增完成后,熔解曲线分析的程序为:95 ℃变性15 s;60 ℃退火15 s;以0.07 ℃/s 的速率升温,10 次/℃采集荧光信号,至90 ℃保持1 s。 采用Light Cycler 96 软件进行熔解曲线分析。

2 结果与分析

2.1 NRT1.1B 序列分析及功能标记的设计

根据NRT1.1B基因编码区第980 位的SNP变异位点设计分子标记,根据位点上下游基因序列设计了4 条引物,见表1。

表1 NRT1.1B 基因分子标记引物序列

2.2 功能标记的检测及方法

分别利用引物组合NRT1.1B-HRM -F1R1、NRT1.1B-HRM-F2R1、NRT1.1B-HRM-F2R2、NRT1.1B-HRM-F1R2 对日本晴和NM73 进行扩增分型,结果表明,利用NRT1.1B-HRM-F1R1 引物组合得到的熔解曲线比较平滑,能够对两种基因型的样品进行多态性区分(图1)。 最终选择NRT1.1B-HRM-F1R1 组合作为本研究后续试验采用的引物对。 利用日本晴和NM73 对筛选的引物对NRT1.1B-HRM-F1R1 的基因分型效果进行验证,能够检测出NM73 为含有NRT1.1B基因的高效单倍型,而日本晴为不含NRT1.1B基因的野生型。

图1 水稻NRT1.1B 基因熔解曲线结果

2.3 功能标记验证

进一步利用Li 等[13]开发的NRT1.1B标记NRT1.1B I1 ID 基于HRM 方法进行验证(图2),分型结果与NRT1.1B-HRM-F1R1 一致。

图2 利用NRT1.1B I1 ID 标记检测NRT1.1B 基因

2.4 水稻品种中NRT1.1B 的检测

利用筛选的引物对检测78 份山东省地方水稻品种,共检测到13个品种为含有NRT1.1B基因(图3 和表2)的高效单倍型,其他65个品种均不含有NRT1.1B基因。 而且PCR 扩增后,仅需8 min 即可完成78个样品的NRT1.1B基因分型。

图3 山东地方水稻品种NRT1.1B 基因检测结果

表2 山东地方水稻品种NRT1.1B 基因分型结果

2.5 水稻材料NRT1.1B 基因型测序验证

为了验证NRT1.1B 标记检测的准确性,对10份水稻材料(紫皮水旱稻、青旱稻、铁耙子、水旱稻-2、粘稻、旱粘稻-1、小黄稻、竹秆青、大青秸-1和大红芒-1)的NRT1.1B基因进行PCR 扩增,然后测序,部分测序结果见图4。 其中,SNP 位点碱基是T 时,基因型为含NRT1.1B基因的高效单倍型;SNP 位点碱基是C 时,基因型为不含NRT1.1B基因的野生型。

图4 部分水稻材料NRT1.1B 基因SNP 位点的测序分型结果

对10 份材料的测序结果进行分析发现,6 份的基因型与NM73 相同,分别为紫皮水旱稻、青旱稻、铁耙子、水旱稻-2、粘稻和旱粘稻-1;4 份的基因型与日本晴相同,分别为小黄稻、竹秆青、大青秸-1 和大红芒-1。 测序结果与利用本研究开发标记得到的基因分型结果一致,即NRT1.1B 标记能够准确鉴定出含有NRT1.1B的材料,可为水稻氮高效基因育种提供技术支持。

3 讨论与结论

随着水稻功能基因组学的发展,已克隆了一个编码NAD(P)H 依赖型硝酸还原酶的OsNR2[14],克隆了OsNRT2.2、OsNRT2.3a、OsNRT2.4、OsNRT2.3b和OsLHT1等多个水稻硝酸根吸收和转运基因[15-17],鉴定了氮高效利用基因NRT1.1A[18]和Ef-cd[19],兼具早熟、高产、氮高效育种应用价值,为氮高效分子育种提供了基因位点。

随着氮高效基因的挖掘,陶亚军等[20]对70份常规籼稻、34 份常规粳稻和84 份太湖资源水稻材料进行氮高效基因鉴定,发现OsNR2在籼稻中分布较广;OsNPF6.1、OsTCP19、OsGRF4在籼稻中分布较少且在常规粳稻中未被检出,常规粳稻中仅含有OsLHT1[21];方琳等[10]对134 份粳稻品种进行NRT1.1B检测,发现均无高效基因型。 本研究通过开发用于HRM 方法的氮高效基因NRT1.1B的功能标记,并对78 份山东省地方品种进行NRT1.1B筛选,得到13 份含有NRT1.1B基因的高效单倍型材料。 这为水稻氮高效品种的培育提供了供体材料和技术支撑,可加快育种进程。

研究发现,聚合籼型OsNR2和NRT1.1B位点,氮利用效率比单个基因更高[20]。 下一步将针对该问题,开发可利用的功能标记,结合传统育种手段,对不同氮高效基因系进行聚合,以期将多个基因导入到主推的粳稻品种中,以提高氮利用效率。

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