液相色谱串联质谱法测定肉制品中氯霉素

◎ 陈宁宁，张志然

（烟台市标准计量检验检测中心，山东 烟台 264003）

氯霉素是一种抑菌性广谱抗生素，对革兰氏阳性菌和革兰氏阴性菌均有较好的抑制作用，对立克次体、衣原体也有抑制作用[1]。因其高效廉价，曾在畜牧业中广为应用[2]。然而由于其对造血系统有严重的不良反应，且细菌对氯霉素有发展缓慢的耐药性，所以对其使用已经做出严格控制，国家全面禁止将氯霉素用于所有食品动物[3]。我国发布的《食品中可能违法添加的非食用物质和易滥用的食品添加剂品种名单（第五批）》（整顿办函〔2011〕1 号）中将氯霉素列为在肉制品中可能违法添加的非食用物质，在肉制品中不得检出。

肉制品中氯霉素的国家标准检测方法为GB/T 22338—2008，包括气相色谱-质谱法和液相色谱-质谱/质谱法[4]。两种方法的前处理均较为复杂，存在步骤烦琐、耗时长的问题。本文旨在通过简化、优化液相色谱串联质谱法的前处理过程，在满足检验需求的基础上提高检测效率，节约检测时间，减少试剂的使用。

1 材料与方法

1.1 材料与设备

样品：肉制品，市售。

氯霉素标准溶液、氯霉素-D5 标准溶液，浓度均为100 μg·mL-1，天津阿尔塔科技有限公司；实验用水为Millipore 制18.2 MΩ·cm 超纯水；乙腈、甲醇，均为色谱纯，德国默克股份两合公司；正己烷（色谱纯），天津市科密欧化学试剂有限公司。

LCMS-8050 液相色谱-质谱联用仪，配有电喷雾离子源，日本岛津公司；GM200 刀式研磨仪，德国Retsch（莱驰）公司；Vortex Point-2 迷你混合仪，上海力辰邦西仪器科技有限公司；KQ-500DB 数控超声波清洗器，昆山舒美超声仪器有限公司；HC-12A 自动氮吹浓缩仪，上海安谱科学仪器有限公司；TGL20MW 台式高速冷冻离心机，湖南赫西仪器装备有限公司。

1.2 仪器工作条件

（1）色谱条件。Hypersil GOLD 液相色谱柱（100 mm×2.1 mm×3 μm）；流动相A 为水，流动相B 为乙腈。流动相梯度：0 ～1.5 min，乙腈由5%升到25%；1.5 ～2.5 min，乙腈由25%升到45%；2.5 ～3.0 min，乙腈由45%升到95%，保持1 min；4.0 ～4.5 min 乙腈由95%降到5%，保持1.5 min。流动相流速为0.4 mL·min-1，进样量5 μL，柱温40 ℃。

（2）质谱条件。LC-MS 接口为电喷雾接口（ESI）负离子模式，检测方式为多重反应监测（MRM）。以m/z321.00/152.10 和321.00/257.00 为目标物氯霉素的定性离子对，以m/z326.00/157.00 和326.00/262.00为内标物氯霉素-D5 的定性离子对，分别以m/z321.00/152.10 和m/z326.00/157.00 为氯霉素和氯霉素-D5 的定量离子对。雾化气和干燥气为氮气，雾化气流速为3.00 L·min-1，干燥气流速为5.00 L·min-1。脱溶剂管温度为250 ℃，加热温度为400 ℃。碰撞能量（CE）为-25.0 eV。

1.3 样品前处理

称取5 g 粉碎的肉制品于50 mL 具塞离心管中，加入100 ng·mL-1内标溶液100 μL 和10 mL 乙腈，在混合仪上涡旋振荡1 min，离心取上清液，再提取一次合并提取液于分液漏斗中。加入5 mL 乙腈饱和的正己烷，振荡5 min，静置分层，取上清液氮气吹干。用1 mL 甲醇/水（1+1，V/V）定容，涡旋振荡30 s，经0.45 μm 有机相滤膜过滤后，上机待测。

1.4 标准溶液配制

氯霉素标准中间液（100 ng·mL-1、10 ng·mL-1）：氯霉素标准物质（100 μg·mL-1）用甲醇稀释得到；氯霉素-D5 标准中间液（100 ng·mL-1）：氯霉素-D5 标准物质（100 μg·mL-1）用甲醇稀释得到。

氯霉素标准系列溶液：氯霉素标准中间液和氯霉素-D5 标准中间液用甲醇/水（1+1，V/V）稀释得到，其中氯霉素浓度分别为0.5 ng·mL-1、1.0 ng·mL-1、2.0 ng·mL-1、5.0 ng·mL-1、10.0 ng·mL-1； 内 标 氯 霉素-D5 的浓度为10.0 ng·mL-1。

2 结果与分析

2.1 前处理方法的选择

氯霉素液质法的样品前处理步骤一般包括提取、净化、浓缩、溶解。标准和相关文献中提取剂主要有乙腈[4-5]和乙酸乙酯[6-7]两种，本实验分别以乙腈和乙酸乙酯为提取剂进行对比实验，色谱图见图1。比较后发现以乙腈作为提取剂时基质干扰更少、响应值更高、灵敏度更好，最后选用乙腈为提取剂。净化步骤的目的是去除脂肪和其他干扰物质，一般使用有机溶剂萃取和固相萃取，使用固相萃取柱需要淋洗液和洗脱液，且步骤多、过程烦琐，因此本实验仅使用正己烷净化。

图1 不同提取剂下氯霉素加标0.2 μg·kg-1 样品色谱图

2.2 标准曲线绘制

按上述仪器工作条件测定氯霉素标准溶液系列，以目标物与内标物浓度比值为横坐标，目标物与内标物的峰面积比值为纵坐标，绘制标准曲线。回归方程为y=0.073 2x+0.004 6，相关系数r2=0.999 8，氯霉素浓度在0.5 ～10.0 ng·mL-1的线性关系良好。

2.3 检出限和定量限

通过空白样品加标获得方法的检出限和定量限，加标浓度为0.1 μg·kg-1时信噪比平均值为12，逐步降低加标浓度，信噪比（RSD）约等于10 时得出氯霉素的定量限为0.08 μg·kg-1，信噪比（RSD）约等于3 时得出氯霉素的检出限为0.03 μg·kg-1。

2.4 精密度和加标回收实验

取空白样品进行不同水平加标回收实验，每个加标水平进行6 次平行实验，结果如表1 所示。由表1可知，氯霉素的加标回收率在90%～95%，RSD 为3.9%～9.4%，符合实验室质量控制规范要求。

表1 精密度和加标回收实验结果表（n=6）

2.5 加标样品检测谱图

氯霉素加标0.6 μg·kg-1样品色谱图见图2。由图2可知，氯霉素和氯霉素-D5 出峰明显，峰形较好，与杂峰分离良好，没有明显干扰，且分析时间短。说明本方法在样品检测时可以实现良好的分离分析。

图2 加标0.6 μg·kg-1 样品的色谱图

3 结论

本文通过优化前处理过程，实现了肉制品中氯霉素的简单、快速、准确的检测。该方法不仅降低了检测成本，提高了检测效率，同时方法的检出限和回收率均能满足肉制品中氯霉素的分析要求。