饶桂波,邵洪泽,胡桂学*,吴健敏
(1.广西兽医研究所,广西南宁530001;2.吉林省兽医科学研究所,吉林长春130062;3.吉林农业大学,吉林长春130118)
目前诊断鹅细小病毒(GPV)的主要方法有琼脂扩散试验、免疫荧光抗体试验、黄牛精子抑制试验、ELISA 和PCR 等[1-4]。近年来将变性高效液相色谱法(DHPLC)与PCR 方法结合用于微生物的检测,使PCR 方法的敏感度提高了100倍,大大提高了样品的检出率[5-6]。为了解决鹅群中因GPV 排毒量低而难以检出的问题,本研究拟建立一种敏感性更高的GPV PCR-DHPLC 检测方法,用于鹅群中GPV 的检测,为临床GPV 感染的检测,提供一种特异、敏感、快速、高通量的检测手段。
GPV JLDA 株,由吉林省畜牧兽医科学研究院赠送;GPV JLTP株,由本实验室分离保存。
Taq DNA Polymerase、dNTPs、100 bp DNA Ladder、T4DNA 连接试剂盒、pMD18-T 载体等,购自宝生物工程有限公司(大连)。
根据GenBank中VP3 的基因序列,用Primer Premier 5.0软件设计引物,序列如下:P1:5'-ATA AGCGCC TTTCACAGC-3',P2:5'-AACGCAGGATCAGACGAA-3',由宝生物工程有限公司(大连)合成。
采用50μL 反应体系,在0.5 mL 反应管中依次加Buffer 5μL、2.5mmol/L dNTPs 2μL、灭菌二馏水35μL、2U/μL Taq酶1μL、20pmol/μL上游引物、下游引物各1μL、模板5μL。混匀后稍离心,通过梯度PCR 确定反应条件。
根据变性高效液相色谱仪Aglient 1100 色谱柱:PS.DVB&C18DNASep色谱柱(4.6mm ×50 mm,粒度3mm)。利用仪器软件,根据目的基因序列的大小,碱基比率等预测柱温。在柱温确定后,摸索流动液体配比及流速,确定最佳条件。
提取鹅副粘病毒、鸭瘟病毒及正常番鸭胚尿囊液的核酸进行PCR,按照1.4 的体系条件对PCR产物,进行PCR-DHPLC检测,鉴定其特异性。
将GPV JLTP株病毒接种番鸭胚,提取尿囊液中的病毒核酸作为模板,利用上述引物扩增目的片段,扩增产物连接到pMD18-T 载体上克隆。……