董奕裕 黄晓文 李建兰
1浙江省荣军医院实验室(浙江嘉兴314000);2武警海警总队医院检验科(浙江嘉兴314000)
肿瘤细胞自身的侵袭力和转移是导致肿瘤患者死亡的主要原因[1-2]。位于肿瘤细胞周围的细胞外基质(extracellular matrix,ECM)是肿瘤微环境的基本组成部分,肿瘤细胞与ECM黏附,通过ECM的降解达到转移,同时也为肿瘤生长提供必要的生长因子[3]。Talin直接与β-整合素细胞质尾部结合,然后通过其肌动蛋白结合域直接连接整联蛋白与细胞骨架[4],对肿瘤的生长和转移起着至关重要的作用[5]。在脊椎动物中有两个Talin基因 TLN1和 TLN2,编码 Talin1和 Talin2,Talin2与Talin1有74%的同源性,Talin1可调节粘着斑(focal adhesion,FA)动力学、细胞迁移和细胞侵袭[6-7];最近的研究[8]表明Talin2 knockdown能抑制肝癌细胞的迁移,但关于Talin2在肿瘤侵袭和转移中的作用机制目前还不清楚。本研究拟通过Talin2 shRNA慢病毒感染MDA-MB-231细胞构建Talin2 knockdown稳定细胞系,研究Talin2对MDA-MB-231细侵袭的影响,分析Talin2通过细胞凋亡途径在乳腺癌发生和发展中的作用和机制,为乳腺癌诊断和治疗提供新的方法和依据。
1.1 主要细胞、试剂 细胞株MDA-MB-231由温州医科大学检验与生命科学学院实验室保存;质粒由该实验室提供;胎牛血清、DMEM培养基购自Gibco;LipofectaminTM2000均购自 Invitrogen公司;Talin2转染细胞株通过嘌呤霉素筛选。
1.2 方法
1.2.1 细胞转染及稳定细胞系的建立 按照lipofectamintm 2000转染试剂产品操作手册进行,以pLentiLox3.7慢病毒核心空载体和包装质粒VSVG、RSV-REV和pMDLg/pRRE按一定比例混合,采用脂质体共转染慢病毒系统转染293T细胞,于37℃、5%CO2培养48~72 h。将收集的病毒微粒感染乳腺癌细胞MDA-MB-231,并过夜培养。用1 mg/mL嘌呤霉素作用于感染的细胞20 d,筛选稳定表达慢病毒shRNA空载和Talin2 shRNA的细胞系……p>