雷公藤多苷调控PI3K/AKT/mTOR通路对Graves病小鼠甲状腺功能和氧化应激状态的作用研究

2020-08-28 08:40王思瑶陆春晖
实用药物与临床 2020年8期
关键词:组织细胞雷公藤脏器

张 洁,王思瑶,陆春晖,罗 荔

0 引言

Graves病又称为毒性弥漫性甲状腺肿(Toxic diffuse goiter),是一种自身免疫性疾病,多数患者同时有高代谢症和甲状腺肿大,其发病机制目前尚不明确,可能与环境因素、精神因素、遗传因素、病毒及细菌感染等都有一定的关系[1-3]。目前,有研究表明,Graves病可能与甲状腺组织细胞PI3K/AKT/mTOR通路的过度激活有关[2-5]。研究表明,雷公藤多苷具有抗炎、抗过敏、抗肿瘤等作用,对痛风、类风湿性关节炎、糖尿病肾病等疾病均有疗效[6-8],同时,能够调节PI3K/AKT/mTOR通路相关蛋白的表达,发挥其抗肿瘤、卵泡修复等作用[9-11]。本文研究雷公藤多苷对Graves病小鼠甲状腺功能和氧化应激状态的作用及机制,为Graves病的临床治疗提供新的参考和依据。

1 材料与方法

1.1 实验材料 BALB/c雌性小鼠60只,SPF(Specific pathogen Free)级别,6周龄,体重18~20 g,购自新疆医科大学动物实验中心,购买后进行72 h适应性饲养,自由进食、饮水。雷公藤多苷购于浙江得恩德制药有限公司,PI3K、AKT、mTOR和GAPDH抗体均购自Proteintech公司,RIPA蛋白裂解液购自上海碧云天公司,表达TSHR-A亚单位的重组腺病毒(Ad-TSHR289)购自北京诺赛基因组研究中心有限公司,ELISA检测试剂盒均购自北京索莱宝科技有限公司,ECL显色液购自Thermo公司,全自动生化分析仪购自北京岛津公司,双垂直电泳仪、转印电泳仪、凝胶成像仪均购自伯乐生命医学产品有限公司。T3、T4、TRAb ELISA检测试剂盒均购自武汉菲恩生物科技有限公司。

1.2 Graves病小鼠模型的建立及给药 60只BALB/c小鼠12只作为对照组,其余采用Ad-TSHR 289免疫的方法建立Graves病小鼠模型[12-13]。取Ad-TSHR289 108 IU,用PBS稀释至50 μl后,胫前肌注,每隔3周1次,共3次,并于第3次免疫完成4周后,通过眼眶后静脉丛取血,以放射受体分析法测定小鼠血清TSH、TRAb,TRAb阳性同时伴T4升高、TSH水平降低者视为造模成功。将造模完成后的小鼠随机分为4组,每组12只,分别为模型组、雷公藤多苷低剂量组、雷公藤多苷中剂量组、雷公藤多苷高剂量组。雷公藤多苷低、中、高剂量组分别灌胃给予小鼠20、40、80 mg/kg雷公藤多苷[14-15],对照组及模型组灌胃给予小鼠等量生理盐水,所有组别每天定时给药1次,连续给药21 d。最后一次给药结束24 h后,方可进行后续实验。

1.3 各组小鼠血清TRAb、T4、T3水平及肝功能指标的测定 小鼠通过眼眶静脉丛取血至干净离心管中,于4 ℃静置4 h,然后置于离心机中,4 ℃、3 500 r/min离心10 min。取上清液,按照ELISA 试剂盒说明书检测小鼠血清TRAb、T4、T3水平,并利用全自动生化分析仪检测小鼠血清丙氨酸氨基转移酶(ALT)、天冬氨酸氨基转移酶(AST)和碱性磷酸酶(ALP)水平。

1.4 小鼠SOD活性、GSH、MDA水平检测 小鼠处死后,迅速分离肝脏组织,按照SOD活性检测试剂盒说明书,检测各组小鼠肝脏SOD活性,参照GSH检测试剂盒说明书检测小鼠肝脏GSH水平,按照脂质氧化(MDA)检测试剂盒说明书检测小鼠肝脏MDA水平。

1.5 各组小鼠甲状腺组织样本的采集并计算甲状腺脏器指数 颈椎脱臼处死小鼠后迅速分离甲状腺组织,用4 ℃预冷的生理盐水清洗,除去血液,滤纸吸干表面水分后称重,计算脏器指数。然后将一部分甲状腺组织放入10%中性甲醛中固定,其余部分放入玻璃匀浆器中,加入RIPA蛋白裂解液,用玻璃匀浆器匀浆,直至充分裂解,置于4 ℃离心机,以12 000 r/min离心10 min,用移液枪将上清液移至另一干净离心管中,并向其中加入SDS loading buffer,混匀后放入100 ℃水浴5 min,然后放入-20 ℃冰箱储存备用。脏器指数按照以下公式进行计算:脏器指数=甲状腺湿重(mg)/小鼠体重(g)×100%

1.6 组织病理学检查 将在10%中性甲醛中固定24 h后的小鼠甲状腺组织转移至75%的酒精中,经自动组织脱水机脱水、透明处理,在石蜡包埋机中浸蜡、包埋,进行5 μm切片,水浴展开,捞片,沥干,放恒温箱中烘干,置于烘箱中60 ℃烤2 h,常规苏木精-伊红染色(E染色),在显微镜下进行组织病理学观察。HE染色步骤:①脱蜡:将石蜡切片依次置于二甲苯(Ⅰ)5 min→二甲苯(Ⅱ)5 min;②复水:依次置于100%乙醇2 min→95%乙醇1 min→80%乙醇1 min→75%乙醇1 min→蒸馏水洗2 min,各2次,然后把水吸干;③苏木精染色:置于苏木精溶液中2 min,自来水流水冲洗2 min,把水吸干;④分化:1%盐酸乙醇分化30 s,自来水浸泡15 min,吸干水;⑤伊红染色:置于伊红溶液中2 min;⑥脱水:依次置于95%乙醇(Ⅰ)5 min→95%乙醇(Ⅱ)5 min→100%乙醇(Ⅰ)5 min→100%乙醇(Ⅱ)2 min;⑦封片:置于通风橱,待乙醇彻底干后依次置于二甲苯(Ⅰ)5 min→二甲苯(Ⅱ)5 min,待载玻片上残留二甲苯挥干后用中性树胶封片。

1.7 Western blot实验 将冻存的小鼠甲状腺组织蛋白液于室温下融化后,采用BCA法测定蛋白浓度,处理好待测样品后,取50 μg蛋白进行SDS-PAGE电泳分离,转膜,将分离的蛋白电转移至PVDF膜上。封闭液室温封闭1 h,经PI3K、AKT、mTOR、GAPDH抗体(1∶1 000)4 ℃孵育过夜。PBST充分洗膜后,加入二抗(1∶2 000)室温孵育1 h,PBST清洗后显色液显影,利用凝胶成像仪成像后,进行灰度值检测。

2 结果

2.1 雷公藤多苷对Graves病小鼠血清TRAb、T4、T3水平的影响 各组小鼠血清TRAb、T4、T3水平见表1。结果表明,与对照组相比,模型组Graves病小鼠血清TRAb、T4、T3水平均显著升高(P<0.05);与模型组相比,雷公藤多苷各剂量组小鼠血清TRAb、T4、T3水平均显著降低(P<0.05),且表现出一定的剂量依赖性。

2.2 雷公藤多苷对Graves病小鼠肝功能的保护作用 各组小鼠血清ALT、AST、ALP水平见表2。结果表明,与对照组相比,模型组小鼠血清ALT、AST及ALP水平均显著升高(P<0.05);与模型组相比,雷公藤多苷各剂量组小鼠血清ALT、AST及ALP水平均显著降低(P<0.05)。

2.3 雷公藤多苷对Graves病小鼠氧化应激状态的影响 各组小鼠肝脏组织SOD活性、GSH及MDA水平见表3。结果表明,与对照组相比,模型组小鼠肝脏组织SOD活性、GSH水平均显著降低(P<0.05),MDA水平显著升高(P<0.05),与模型组相比,雷公藤多苷各剂量组小鼠肝脏组织SOD活性、GSH水平均显著升高(P<0.05),MDA水平显著降低(P<0.05),并呈现出一定的剂量依赖性。

表1 各组小鼠血清TRAb、T4、T3水平(n=6)

表2 各组小鼠血清ALT、AST、ALP水平比较

2.4 雷公藤多苷对Graves病小鼠甲状腺脏器指数的影响 各组小鼠甲状腺脏器指数见表4。结果表明,与对照组相比,模型组小鼠甲状腺脏器指数显著升高(P<0.05),提示造模成功,与模型组相比,雷公藤多苷低、中、高剂量组Graves病小鼠甲状腺脏器指数均显著降低(P<0.05),且随着雷公藤多苷剂量的增加,Graves病小鼠甲状腺脏器指数逐渐降低,即表现出剂量依赖性。

2.5 雷公藤多苷对Graves病小鼠甲状腺组织病理学的影响 各组小鼠甲状腺组织病理学检查结果见图1。结果表明,与对照组相比,模型组Graves病小鼠甲状腺组织细胞水肿,可见炎性细胞浸润,滤泡增生肥大,提示造模成功;与模型组相比,雷公藤多苷低、中剂量组Graves病小鼠甲状腺组织细胞水肿减轻,细胞排列较整齐,炎症细胞浸润明显减少,雷公藤多苷高剂量组Graves病小鼠甲状腺组织细胞排列整齐,滤泡上皮细胞增生减轻,偶见炎症浸润。

表4 各组小鼠甲状腺脏器指数

图1 各组小鼠甲状腺组织病理学检查结果(200×)

2.6 雷公藤多苷对Graves病小鼠甲状腺PI3K、AKT、mTOR水平的影响 各组小鼠甲状腺组织细胞PI3K、AKT、mTOR水平见图2。结果表明,与对照组相比,模型组Graves病小鼠甲状腺组织细胞PI3K、AKT、mTOR水平均显著升高(P<0.05);与模型组相比,雷公藤多苷各剂量组Graves病小鼠甲状腺组织细胞PI3K、AKT、mTOR水平均显著降低(P<0.05),并表现出剂量依赖性。

3 讨论

Graves病通常伴有肝脏ALT、AST及ALP等指标水平异常的发生。此外,由于Graves病的全身作用,机体长期处于应激状态,会造成机体自由基生成增加或(和)清除能力降低,导致自由基在体内积累而引起氧化应激损伤,通常表现为肝脏SOD活性及GSH水平降低、MDA水平升高[16]。雷公藤多苷(Tripterygium glycosides)是从卫矛科植物雷公藤根提取精制而成的一种脂溶性混合物,是一种广泛使用的抗炎免疫调节中草药提取物,临床上广泛用于痛风、类风湿性关节炎、原发性肾小球肾病、肾病综合征、紫癜性及狼疮性肾炎、糖尿病肾病等多种疾病。此外,研究表明,其能够调节PI3K/AKT/mTOR通路相关蛋白的表达,发挥抗肿瘤、卵泡修复等作用[9-11]。

图2 各组小鼠甲状腺组织细胞PI3K、AKT、mTOR水平

PI3K/AKT/mTOR通路是一种在调节细胞周期中发挥重要作用的细胞内信号传导途径,由调节细胞生长、细胞存活、细胞周期进程、蛋白质翻译和代谢等多种生理功能的多种细胞刺激激活。PI3K/AKT/mTOR通路的异常激活与胃癌、乳腺癌、肺癌等多种疾病的发生密切相关[17-19]。有研究表明,PI3K/AKT/mTOR通路的过度激活与Graves病的发病机制存在一定的关系[2-5]。

本文采用Ad-TSHR 289免疫的方法建立Graves病小鼠模型,研究不同剂量的雷公藤多苷对Graves病小鼠的作用及其对甲状腺组织PI3K/AKT/mTOR通路的影响。结果表明,雷公藤多苷能够呈剂量依赖性地降低Graves病小鼠血清TRAb、T4、T3、ALT、AST及ALP水平,提高小鼠肝脏组织SOD活性及GSH水平,降低肝脏MDA水平,并能够显著降低Graves病小鼠甲状腺脏器指数,改善小鼠甲状腺组织病理学状态,降低Graves病引起的小鼠氧化应激损伤,缓解疾病状态,改善疾病进展及预后。此外,雷公藤多苷能够呈剂量依赖性降低Graves病小鼠甲状腺组织细胞PI3K、AKT、mTOR水平,从而抑制Graves病小鼠甲状腺组织细胞PI3K/AKT/mTOR信号通路的异常激活,进而缓解Graves病小鼠的疾病进展,改善疾病转归。

综上所述,雷公藤多苷能够改善Graves病小鼠甲状腺功能、氧化应激状态,进而缓解由此引发的肝脏损伤的一系列并发症,其作用机制可能与调节PI3K/AKT/mTOR通路有关。

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