hTERC、ASPP2mRNA在子宫内膜癌变过程中的表达变化及意义

2016-01-20 11:07段清尹利荣田晶天津医科大学第二医院天津300211
山东医药 2015年34期
关键词:子宫内膜癌端粒酶

段清,尹利荣,田晶(天津医科大学第二医院,天津300211)

hTERC、ASPP2mRNA在子宫内膜癌变过程中的表达变化及意义

段清,尹利荣,田晶
(天津医科大学第二医院,天津300211)

摘要:目的探讨hTERC、ASPP2mRNA在子宫内膜癌变过程中的表达变化,并探讨其临床意义。方法收集正常子宫内膜、子宫内膜增生(单纯增生、复合增生、不典型增生)、子宫内膜癌组织,分别采用荧光原位杂交法、半定量RT-PCR法检测hTERC、ASPP2mRNA,分析二者相关性及其与子宫内膜癌临床病理特征的关系。结果在正常子宫内膜、子宫内膜单纯增生、复合增生、不典型增生及子宫内膜癌中hTERCmRNA表达依次升高、ASPP2mRNA表达依次降低,除hTERC在正常子宫内膜与单纯增生之间、ASPP2mRNA在不典型增生与子宫内膜癌之间的表达差异无统计学意义(P均>0.05)外,其余两两比较差异均有统计学意义(P均<0.05);不同子宫内膜组织中hTERC、ASPP2mRNA的表达呈负相关(r =-0.625,P<0.05); hTERC、ASPP2mRNA表达与子宫内膜癌组织学分级、癌浸润深度、淋巴结转移有关(P均<0.05),hTERCmRNA表达与临床分期无关(P>0.05),ASPP2mRNA表达与临床分期有关(P<0.05)。结论在子宫内膜癌变过程中,hTERCmRNA表达上调、ASPP2mRNA表达下调或缺失,二者有助于子宫内膜癌的早期诊断和预后判断。

关键词:子宫内膜癌;端粒酶;子宫内膜增生; hTERC基因; ASPP2基因

子宫内膜癌的发病过程复杂,多种因素参与其中。端粒酶激活可促进肿瘤的发生,hTERC基因在端粒酶活性的上调中起重要作用[1]。ASPP2是一种抑瘤基因[2],ASPP2缺陷可导致肿瘤的发生。本研究通过观察hTERC、ASPP2mRNA在子宫内膜癌变过程中的表达变化,探讨二者对子宫内膜癌早期诊断和预后判断的价值。

1 资料与方法

1.1临床资料收集天津医科大学第二医院病理科2003~2013年手术切除经病理确诊的子宫内膜癌45例,术前均无放、化疗治疗史;另取正常子宫内膜20例及子宫内膜单纯增生28例、复合增生29例、不典型增生26例,均来自因子宫肌瘤或功能失调性子宫出血而行子宫切除者,术前均无激素治疗史。

1.2hTERCmRNA检测采用荧光原位杂交(FISH)技术。以TERC/CSP3dNA双色探针,分别标记TERC基因(3q26.3)及3号染色体着丝粒(3p11.1-q11.1),荧光信号分别为红色和绿色。将石蜡标本切成4 μm厚切片,65℃烘烤2 h,变形杂交,洗涤玻片,自然风干后对FISH荧光信号进行判读。以单个间期细胞核中红色及绿色信号各为2个为正常细胞,单个间期细胞核中红色信号>2个且绿色信号≥2个为hTERC基因扩增异常细胞。计数100个细胞,计算异常细胞所占比例,以此表示hTERCmRNA相对表达量。

1.3 ASPP2mRNA检测采用RT-PCR法。按照Genebank报道的人类ASPP2及β-actinmRNA的基因序列设计PCR引物,以合成的cDNA为模板进行PCR扩增反应。扩增条件: 93℃40 s,64℃40 s,72 ℃50 s,循环30次;最后72℃8min。取6 μL PCR扩增产物行琼脂糖凝胶电泳,用Imagestore-5000系统对所获得的条带做半定量分析,以ASPP2与βactin条带吸光度比值作为ASPP2mRNA相对表达量。

1.4统计学方法采用SPSS17.0统计软件。计量资料以珋x±s表示,各组总体均数比较用方差分析,组间两两比较用q检验;相关性分析采用Spearman's Rho法。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1不同子宫内膜组织中hTERC、ASPP2mRNA相对表达量比较见表1。

2.2不同子宫内膜组织中hTERC、ASPP2mRNA表达的关系子宫内膜组织中,hTERC、ASPP2mRNA

表达呈负相关(r =-0.625,P<0.05)。

表1 不同子宫内膜组织中hTERC、ASPP2mRNA相对表达量比较()

表1 不同子宫内膜组织中hTERC、ASPP2mRNA相对表达量比较()

注:与单纯增生比较,*P<0.05;与复合增生比较,#P<0.05;与不典型增生比较,△P<0.05;与子宫内膜癌比较,○P<0.05。

子宫内膜组织 n hTERCmRNA(%)ASPP2mRNA正常子宫内膜20 4.34±1.84 1.61±0.19单纯增生组织 28 5.79±1.96 1.32±0.16*复合增生组织 29 10.34±1.62* # 0.96±0.09* #不典型增生组织 26 15.57±2.19* #△ 0.70±0.08* #△子宫内膜癌 45 21.42±4.05* #△○ 0.69±0.07* #△

2.3 hTERC、ASPP2mRNA表达与子宫内膜癌临床病理参数的关系见表2。

表2 hTERC、ASPP2mRNA表达与子宫内膜癌患者临床病理参数的关系()

表2 hTERC、ASPP2mRNA表达与子宫内膜癌患者临床病理参数的关系()

临床病理参数 n hTERCmRNA(%)P ASPP2mRNA P临床分期Ⅰ期 23 21.24±3.85 0.91±0.09Ⅱ期 17 24.62±4.32>0.05 0.77±0.09<0.05Ⅲ、Ⅳ期 5 26.58±4.91 0.61±0.07分化程度高分化 18 21.52±3.75 0.88±0.08中分化 12 25.01±4.62<0.05 0.75±0.08<0.05低分化 15 30.39±5.01 0.64±0.09浸润深度内膜层 20 20.42±4.24 0.89±0.10 ≤1/2肌层 19 26.15±4.36<0.05 0.71±0.07<0.05 >1/2肌层 6 31.24±5.27 0.70±0.08淋巴结转移无37 21.46±4.26 <0.050.82±0.09<0.05 有8 30.24±5.05 0.64±0.07

3 讨论

hTERC是合成端粒重复序列的模板,是端粒酶活性必需的核心组分之一,能够延长端粒和保持其稳定,且单一外源性TERC就能增强细胞的增殖潜能及端粒酶的活性,因此hTERC基因在端粒酶活性的上调中起重要作用[3~5]。研究已证实,hTERC基因在宫颈癌组织中异常扩增,但其在子宫内膜癌中的表达情况研究较少。Paul-Salojedny等[6]发现,子宫内膜癌组织中hTERC阳性率(85.7%)高于正常子宫内膜组织(37.5%)。提示hTERC在子宫内膜癌的发生中起重要作用。Yokoyama等[7]发现,用于清除hTERC模板区的36-核酶能抑制子宫内膜癌细胞系的端粒酶活性,导致癌细胞凋亡。提示将hTERC模板区作为核酶的靶分子,降低端粒酶活性,有望成为子宫内膜癌靶向治疗的新靶点。本研究显示,在子宫内膜癌变过程中,hTERC基因表达逐渐增高,提示其在子宫内膜癌发生发展中具有重要作用。

ASPP2是p53结合蛋白家族促凋亡成员,通过增强p53的促凋亡基因启动子与DNA结合而促进细胞凋亡[8,9]。动物实验显示,ASPP2等位基因具有明显的肿瘤抑制作用,可抑制肿瘤的发生[10,11]。最近研究表明,ASPP2可通过其N端结构,以非p53依赖途径发挥其生物学功能。ASPP2通过N端与RAS结合,由RAS/RAF途径促进细胞衰老,从而抑制肿瘤[12,13]。亦可通过其他机制来完成细胞的损伤修复和诱导凋亡[14,15],如与p53高度同源的p73和p63分子结合。本研究显示,在正常子宫内膜及子宫内膜单纯增生组织、复合增生组织、不典型增生组织、内膜癌的连续病变中,ASPP2基因表达逐渐减少或缺失。支持ASPP2基因突变失活导致ASPP2蛋白低水平表达,从而失去了对细胞生长、增殖的负调控作用,促进肿瘤发生发展的观点,证实ASPP2低表达是子宫内膜癌的早期分子事件。

本研究显示,在子宫内膜组织中,hTERC、ASPP2mRNA表达呈负相关,且二者基因表达与子宫内膜癌的临床分期、组织学分级有关。表明二者在子宫内膜癌的发生发展中起重要作用,有助于子宫内膜癌的早期诊断和预后判断。

参考文献:

[1]Bin H,Ruifang W,Ruizhen L,et al.Detention of HPV L1 capsid protein and hTERC gene in screening of cervical cancer[J].Iran J Basicmed Sci,2013,16(6): 797-802.

[2]Kampa KM,Acoba JD,Chend,et al.Apoptosis-stimulating protein of p53(ASPP2)heterozygousmice are tumor-prone and have attenuated cellulardamage response thresholds[J].Proc Natl Acad Sci USA,2009,106(11): 4390-4395.

[3]Zhao XY,Cui Y,Jiang SF,et al.Human telomerase gene and high-risk human papillomavirus infection are related to cervical intraepithelial neoplasia[J].Asian Pac J Cancer Prev,2015,16(2): 693-697.

[4]Kuglik P,Kasikova K,Smetana J,et al.Molecular cytogenetic analyses of hTERC(3q26)andmYC(8q24)genes amplifications in correlation with oncogenic human papillomavirus infection in Czech patients with cervical intraepithelial neoplasia and cervical carcinomas[J].Neoplasma,2015,62(1): 130-139.

[5]徐静,李磊,张丽,等.不同CIN分级宫颈病变组织中hTERC基因表达及意义[J].山东医药,2014,54(14): 43-44.

[6]Paul-Samojednym,Witek A,Samojedny A,et al.Human tolomerase RNA as endogenous control in endometrial tissue[J].Int J Gynecol Cancer,2005,15(2): 343-348.

[7]Yokoyama Y,Wan X,Shinohma A,et al.Hammerheadribozymes tomodulate telomerase activity of endometrial carcinoma cell[J].Hum Cell,2001,14(3): 223-231.

[8]李士军,施广霞,袁宏,等.非小细胞肺癌p53凋亡刺激蛋白家族表达临床研究[J].中华实用诊断与治疗杂志,2010,24(11): 1060-1062.

[9]Ahn J,Byeon IJ,Byeon CH,et al.Insight into the structural basis of pro-and antiapoptotic p53modulation by ASPP proteins[J].Biol Chem,2009,284(20): 13812-13822.

[10]Kampa KM,Acoba JD,Chend,et al.Apoptosis-stimulating protein of p53(ASPP2)heterozygousmice are tumor-prone and have attenuated cellulardamage response thresholds[J].Proc Natl Acad Sci USA,2009,106(11): 4390-4395.

[11]Notarim,Hu Y,Koch S,et al.Inhibitor of apoptosis-stimulating protein of p53(iASPP)prevents senescence and is required for epithelial stratification[J].Proc Natl Acad Sci USA,2011,108(40): 16645-16650.

[12]Wang Z,Liu Y,Takahashim,et al.N terminus of ASPP2 binds to Ras and enhances Ras/Raf/MEK/ERK activation to promote oncogene-induced senescence[J].Proc Natl Acad Sci USA,2013, 110(1): 312-317.

[13]Zhou Q,Zhao H,Gong W,et al.Phosphorylation status of ASPP2modulates p53 apoptotic function in oxaliplatin-induced apoptosis of colorectal cancer HCT116 cells[J].Zhonghua Zhong Liu Za Zhi,2014,36(6): 418-423.

[14]Ethayathulla AS,Nguyen HT,Viadiu H.Crystal structures ofdNA-bindingdomain tetramer of the p53 tumor suppressor familymember p73 bound todifferent full-site response elements[J].J Biol Chem,2013,288(7): 4744-4754.

[15]Guan X,Zhang N,Yin Y,et al.Polymorphisms in the p63 and p73 genes are associated with ovarian cancer risk and clinicopathological variables[J].J Exp Clin Cancer Res,2012,31(24): 89.

收稿日期:( 2015-02-28)

通信作者:田晶

文章编号:1002-266X(2015)34-0038-03

文献标志码:B

中图分类号:R737.3

doi:10.3969/j.issn.1002-266X.2015.34.016

猜你喜欢
子宫内膜癌端粒酶
新研究有望增强端粒酶抗衰老功能
基于杂交链式反应辅助多重信号放大的端粒酶灵敏检测
配对盒基因2和CD44基因在子宫内膜癌中的表达及意义
子宫内膜癌低场MRI影像学特点及临床应用研究
封闭端粒酶活性基因治疗对瘢痕疙瘩成纤维细胞的影响
子宫内膜癌患者腹腔细胞学阳性的临床价值及其对预后的影响分析
磁共振弥散加权与动态增强成像在子宫内膜癌分期的作用分析
腹腔镜在早期妇科恶性肿瘤手术中的临床应用
端粒酶逆转录酶与转录激活蛋白-1在喉癌组织中的表达及相关性研究
端粒酶活性与白内障