HPLC-ESI-MS/MS分析金钗石斛花花色苷组成及其抗氧化活性测定

2018-09-10 07:11宋小蒙王洪新马朝阳寇兴然贾启海
江苏农业科学 2018年15期
关键词:金钗矢车菊分子离子

宋小蒙, 王洪新,, 马朝阳, 寇兴然, 贾启海

(1.江南大学食品学院,江苏无锡 214122; 2.国家功能食品工程技术研究中心,江苏无锡 214122;3.赤水国礼金钗石斛发展有限公司,贵州遵义 564700)

金钗石斛(DendrobiumnobileLindl.)系兰科石斛属多年生草本植物,别称扁金钗、扁黄草、扁草,是名贵的中药材[1],具有较高的食用和营养价值,其茎入药,性微寒,味甘,具有益胃生津、滋阴清热等功效[2],主要生长在贵州、四川、广西、云南等地[3]。金钗石斛花花形俏丽,颜色鲜艳,有较高的药用价值,能够滋阴润肺、增强免疫力、抗衰老[4]等。花色苷(Anthocyanin)属于类黄酮类物质,是一种天然水溶性色素,广泛存在于植物的花、果、茎、叶中,具有清除自由基、抗炎症、降血脂等功效,受到国内外学者的广泛关注。目前发现的花色苷有20多种,以天竺葵素、矢车菊素、芍药素、飞燕草素、锦葵素和牵牛花素最为常见[5]。

当前对花色苷类化合物的研究主要集中在紫薯、蓝莓、甘蓝等物质,对于金钗石斛花花色苷组成的报道很少。本试验以贵州金钗石斛花为原料,对其进行提取纯化并使用高效液相色谱-质谱联用法(HPLC-MS/MS)分析其组成,进一步通过还原力测定、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)法和2,2′-联氨-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二铵盐(ABTS)法对其抗氧化能力进行研究,从不同方面为贵州金钗石斛花的进一步开发和研究提供科学的依据。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

金钗石斛花,购自贵州省赤水国礼金钗石斛发展有限公司;AB-8型大孔树脂,购自沧州宝恩吸附材料科技有限公司;乙醇、甲酸、盐酸、氯化铁、六氰合铁酸钾、三氯乙酸(TCA)、维生素C、磷酸二氢钠、磷酸氢二钠和过硫酸钾均为分析纯,购自国药集团化学试剂有限公司;乙腈、甲醇为色谱纯,购自美国Tedia公司;DPPH、ABTS、水溶性维生素E(Trolox),均购自美国Sigma公司。

Waters超高效液相色谱-质谱联用仪,购自美国Waters公司,配有可变波长紫外检测器——二极阵列管检测器(PDA)和数据处理软件Masslynx4.1工作站;DZF-6050型真空干燥箱,购自上海一恒科学仪器有限公司;AR224CN型电子天平,购自奥豪斯仪器(上海)有限公司;SHZ-DIII型循环水真空泵,购自上海羌强实业发展有限公司;Multiskan GO全波长酶标仪购自美国赛默飞世尔科技公司。

1.2 试验方法

1.2.1 花色苷的提取与纯化 将10 g金钗石斛花干粉浸于1 L 50%乙醇(0.1% HCl)中,4 ℃下遮光提取24 h,抽滤得提取液,50 ℃真空浓缩。将浓缩液上样于经过预处理[6]的 AB-8型大孔树脂,用3倍柱体积0.5%甲酸溶液洗脱树脂,去除糖和蛋白质,然后用3倍柱体积70%乙醇溶液(含1%甲酸)洗脱。洗脱液于50 ℃真空浓缩去除乙醇,真空冷冻干燥得干物质[7]。取一部分溶于水中,其余部分低温保存。

1.2.2 液相色谱条件 色谱柱:Waters Acquity-BCH C18(柱长100 mm×柱内径2.1 mm,填料的孔径为1.7 μm),流速为0.3 mL/min,柱温为45 ℃,进样量为3 μL,检测器:二极管阵列检测器,检测波长为520 nm,梯度洗脱条件见表1。

1.2.3 质谱条件 电喷雾离子源(ESI):正离子扫描模式,毛细管电压为3.2 kV,锥孔电压为30 V,离子源温度为100 ℃,脱溶剂温度为400 ℃,脱溶剂气流量为700 L/h,锥孔气流量为50 L/h,离子扫描范围m/z为100~2 000。

表1 梯度洗脱条件

1.2.4 还原力测定 用铁氰化钾法测定还原力[8]。取 10 mL 离心管,依次加入2.5 mL不同浓度的样品、2.5 mL 2.5 mol/L的磷酸缓冲盐溶液(PBS)(pH值为6.6)和2.5 mL 1%六氰合铁酸钾溶液,50 ℃水浴20 min;冷水冷却后,再加入2.5 mL 10%三氯乙酸(TCA)溶液,混匀,3 000 r/min下离心10 min,取上清 2.5 mL,依次加入2.5 mL蒸馏水、0.5 mL 0.1% FeCl3溶液,充分混匀,静置10 min,以水为空白、维生素C为阳性对照,于700 nm测定吸光度。

1.2.5 金钗石斛花对DPPH·清除试验 以Trolox为阳性对照,进行DPPH·清除能力测定[9-10]。在96孔板中加入 270 μL 60 μmol/L DPPH和30 μL不同浓度样品,避光反应 5 min,放入酶标仪中,于517 nm测定吸光度,并计算清除率:

DPPH·清除率=[1-(D1-D2)/D0]×100%。

式中:D1为样品与DPPH反应后在517 nm处的吸光度;D2、D0分别为空白样品、DPPH在517 nm处的吸光度。

1.2.6 金钗石斛花对ABTS+·的清除试验 以Trolox为阳性对照,进行ABTS清除能力测定[11]。将3.5 mmol/L ABTS和2.45 mmol/L过硫酸钾以2 ∶1体积比混合,避光,室温下反应12~16 h,即得ABTS+·储备液。在96孔板中加入 200 μL ABTS+·储备液和10 μL不同浓度样品,反应10 min后放入酶标仪中,于734 nm测定吸光度,并计算清除率:

ABTS+·清除率=[1-(D1-D2)/D0]×100%。

式中:D1为样品与DBTS+·反应后在734 nm处的吸光度;D2为空白样品在734 nm处的吸光度;D0为ABTS+·储备液在734 nm处的吸光度。

2 结果与分析

2.1 金钗石斛花花色苷组分分析

图1是金钗石斛花花色苷溶液在520 nm下的HPLC图谱,可以看出,金钗石斛花花色苷含有多种不同的成分,主要有13种。结合保留时间、质谱信息和相关文献[12-21]对各峰进行推测。图2为峰1的质谱图,保留时间为 8.33 min,分子离子m/z为611,碎片离子m/z为287。其中碎片离子(m/z=287)是分子离子(m/z=611)失去1分子槐糖基(相对分子量为324)所得,碎片离子(m/z=287)为矢车菊素花色苷的特征离子,因此推测峰1为矢车菊素-3-槐糖苷。

峰2的保留时间为9.62 min,分子离子m/z为449,碎片离子m/z为287。其中碎片离子(m/z=287)是分子离子失去1分子葡萄糖基(相对分子量为162)所得,碎片离子(m/z=287)为矢车菊素花色苷的特征离子,因此推测峰2为矢车菊素-3-葡萄糖苷。峰3的保留时间为12.85 min,分子离子m/z为919,碎片离子m/z为287、449、757。其中,碎片离子(m/z=757)是分子离子失去1分子葡萄糖基(相对分子量为162)所得,碎片离子(m/z=449)是分子离子失去1分子槐糖苷和1分子香豆酰(相对分子量为324+146)所得,碎片离子(m/z=287)是碎片离子(m/z=449)失去1分子葡萄糖苷(相对分子量为162)所得,m/z=287的碎片离子为矢车菊素花色苷的特征离子,因此推测峰3为矢车菊素-3-对羟基香豆酰槐糖苷-5-葡糖苷。峰4的保留时间为14.44 min,分子离子m/z为535,碎片离子m/z为287。其中,碎片离子(m/z=287)是分子离子失去1分子葡萄糖基和1分子丙二酰基(相对分子量为162+86)所得,碎片离子(m/z=287)为矢车菊素花色苷的特征离子,因此推测峰4为矢车菊素-3-O-丙二酰葡萄糖苷。峰5的保留时间为 16.50 min,分子离子m/z为757,碎片离子m/z为287、449。其中,碎片离子(m/z=449)是分子离子失去1分子芸香糖苷(相对分子量为308)所得,碎片离子(m/z=287)是m/z=449失去1分子葡糖苷(相对分子量为162)所得,碎片离子(m/z=287)为矢车菊素花色苷的特征离子,因此推测峰5为矢车菊素-3-芸香糖苷-5-葡糖苷。

其他各峰的推测方法与峰1~峰5相同,其质谱信息和推测化合物见表2,本研究仅给出峰1的MS、MS/MS图。观察发现经过酰基化的花色苷保留时间基本大于未酰基化花色苷,多酰化花色苷保留时间大于单酰化花色苷,相同种类花色苷糖基不同,保留时间也不一样。

表2 金钗石斛花中主要花色苷组分

2.2 金钗石斛花花色苷抗氧化能力测定

2.2.1 还原能力的测定 Fe3+得到电子后被还原为Fe2+,体系颜色发生改变,因此可通过颜色变化观察氧化还原状态的改变,吸光度越大说明还原力越强,利用此原理检测金钗石斛花花色苷的还原能力。从图3可以看出,在试验浓度范围内,随着样液浓度的升高,还原能力呈上升趋势,而在同一浓度下维生素C的还原力高于金钗石斛花花色苷的还原能力。

2.2.2 金钗石斛花花色苷对DPPH·的清除作用 DPPH·是一种稳定的有机自由基,醇溶液呈紫色,517 nm处有强吸收,得到1个电子后吸收消失,溶液变浅,其褪色程度与得到电子数相关,因此可利用分光光度法快速测定。从图4可以看出,石斛花花色苷与Trolox均具有较强的清除能力,且清除率随浓度增大而提高,当浓度为500 μg/mL时样液的清除率达86%。两者的半抑制浓度(IC50)分别为33.17、159.92 μg/mL。

2.2.3 金钗石斛花花色苷对ABTS+·的清除作用 ABTS+·与DPPH·类似,均为稳定的有机自由基,抗氧化能力越强,提供电子的能力越强,反应速率越快,因此可以通过测定吸光度判断其抗氧化能力大小。从图5可以看出,样液和Trolox的清除率均随浓度增大而增大,两者的IC50分别为33.55、525 μg/mL,Trolox的清除能力明显大于样液。

3 结论

本试验采用HPLC-MS/MS联用法测定金钗石斛花花色苷组分,其中矢车菊素类化合物有10种,飞燕草色素类化合物有3种,以矢车菊素类化合物为主。此外发现,酰基化的花色苷保留时间基本大于未酰基化花色苷,多酰化花色苷保留时间大于单酰化花色苷,对于相同种类花色苷,糖基不同,保留时间也不一样。金钗石斛花花色苷的还原力随着样液浓度的升高而升高,且具有较强的DPPH自由基清除能力,清除率随浓度增大而增大,当浓度为500 μg/mL时清除率达86%。金钗石斛花花色苷对ABTS+·的清除率随浓度增大而增大,其IC50为 525 μg/mL。

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