水杨酸和硝普钠协同处理对芒果贮藏品质 及抗氧化活性的影响

2021-06-03 02:38任艳芳薛宇豪何俊瑜张黎明
食品科学 2021年9期
关键词:活性氧芒果抗氧化

任艳芳,薛宇豪,田 丹,何俊瑜,*,张黎明,吴 情,刘 树

(1.常州大学环境与安全工程学院,江苏 常州 213164;2.贵州大学农学院,贵州 贵阳 550025)

水杨酸(salicylic acid,SA)和一氧化氮(nitric oxide,NO)是植物中广泛存在的活性小分子,二者往往作为信号分子参与调节植物的生长发育等过程以及植物对生物和非生物的抗性反应[1-2]。近年来,许多研究表明外源SA和NO在提高园艺产品贮藏保鲜效果中具有较好的应用潜力,如外源NO能明显推迟猕猴桃[3]、 香蕉[4]、火龙果[5]、枇杷[6]、哈密瓜[7]等采后果实的后熟软化进程,降低果实呼吸强度或推迟乙烯高峰,减缓果实褐化和腐烂,从而维持果实较好的贮藏品质,有效延长货架期。同样,SA能够降低杏[8]、库尔勒香梨[9]、莲雾果[10]等果实贮藏过程中的硬度降低,延缓果实的成熟衰老,保持较高的营养成分,提高其耐贮性。SA处理还可以提高苹果对Penicillium expansum[11]、葡萄柚对Penicillium digitatum[12]等的抗病性,减少果实腐烂。

通过对现有研究结果分析和比较发现,SA和NO在推迟果实成熟衰老、维持果实贮藏品质和提高果实对采后病害抗性等方面具有很多相同或相似的效果和作用机制。如采用SA或NO供体硝普钠(sodium nitroprusside,SNP)对甜瓜果实进行采前喷施处理,二者均能明显促进贮藏过程中果实抗病物质总酚、类黄酮和木质素积累,诱导苯丙氨酸解氨酶活性,降低甜瓜果实采后病害发生的程度[13-14],采后NO熏蒸处理也明显降低了贮藏甜瓜黑斑病害的发病率,提高果实中相同抗病物质和抗病酶活性[7]。Sharma等[15]采用SA和NO分别处理李果实后发现,二者均可以不同程度地降低贮藏果实的呼吸强度,提高果实的抗氧化酶活性,缓减果实的氧化损伤,减少细胞壁水解酶活性,推迟果实的成熟和软化,延长贮藏期。这些研究表明NO和SA在调控果实成熟衰老和抗病性反应中可能并非独立作用,而是存在协同作用。此外,李翠丹等[16]研究也发现NO可以通过一氧化氮合酶(nitric oxide synthase,NOS)合成途径参与SA诱导的采后番茄果实抗病性反应。

近年来,有研究发现SA和NO在提高植物抵抗非生物胁迫方面表现出协同增效的作用。如外源SA和SNP复合处理能够通过刺激抗氧化反应和乙二醛酶活性有效缓解Zn毒性对红花幼苗的不利影响,其作用明显优于单独处理[2];而在缺Fe胁迫下,SA和SNP能有效缓解花生幼苗叶片黄化,维持离子平衡,减轻氧化损伤的程度,且二者具有协同作用[17];叶面喷施SA和SNP处理明显提高了盐胁迫下棉花幼苗的光合作用和活性氧清除能力,从而促进植株的生长,并且SA+SNP复合处理效果优于各自单独处理[18]。那么SA和NO在参与调节果实成熟衰老和提高果实耐贮性方面是否也存在协同效应值得探讨。

芒果(Mangifera indicaL.)是世界上五大热带水果之一,因其果形美观、气味芳香、口感甜滑、含有丰富的营养物质而深受人们的喜爱[19]。据联合国粮农组织统计,全世界芒果产量已经达到5.06×107t,生产规模在热带水果中列居第3位。然而,芒果作为典型的呼吸跃变型水果,采后果实极易发生后熟衰老,也更容易遭受病原物侵染,导致大量果实腐烂,品质下降,造成巨大的经济损失[20]。因此,如何控制芒果采后后熟腐烂以及延长货架期是一直以来急需解决的问题。研究表明SA和SNP单独处理均能在不同程度上延缓芒果果实的后熟软化及品质的劣变,提高果实的抗病性,减少果实采后病害的发生[21-23],二者之间是否存在协同作用目前还鲜见相关研究报道。为此本实验以‘台农’芒果为试材,用外源NO供体SNP和SA进行采后芒果复合处理,研究不同处理对贮藏期间芒果果实主要外观和内在品质指标的影响,旨在明确NO和SA在芒果果实保鲜中是否具有协同作用;通过对果实中活性氧代谢及抗氧化能力的探讨进一步明确NO和SA协同提高采后芒果果实耐贮性、减少芒果腐烂、保持品质的生理机制,为今后将其应用于芒果及其他果蔬采后贮藏保鲜及品质维持提供依据。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

供试‘台农’芒果(Mangifera indicaL.cv. ‘Tainong’)采自广西省百色市果园。选择果实色度均一、果形正常、果皮光滑无损伤的绿熟期果实。将新鲜的芒果果实采用体积分数0.05%次氯酸钠溶液(有效氯质量分数不低于10%)进行表面消毒3 min,之后用流动的清水冲洗干净后用于实验。

SNP 美国Sigma公司;SA(分析纯) 天津科密欧化学试剂有限公司。

1.2 仪器与设备

GY-1型水果硬度计 杭州托普仪器有限公司;T6新世纪紫外-可见分光光度计 北京普析通用仪器有限责任公司;5804R型高速冷冻离心机 艾本德(中国)有限公司;DW-HL358超低温冰箱 中科美菱低温科技有限公司;XB 130制冰机 宁波格兰特制冷设备制造有限公司;CM-700d色差仪 日本柯尼卡美能达公司;JXFSTPRP-48冷冻研磨仪 上海净信科技有限公司;PAL-1手持式糖量计 日本Atago公司。

1.3 方法

1.3.1 果实处理

前期实验发现,2 mmol/L SA和0.25 mmol/L SNP均能有效减少芒果贮藏期间的腐烂[22-24],根据此将挑选好并表面灭菌后的芒果果实随机分成4 组,分别进行蒸馏水(CK组)、2 mmol/L SA、0.25 mmol/L SNP、2 mmol/L SA+0.25 mmol/L SNP浸果处理5 min,之后取出自然晾干。将芒果放入铺有多层软纸的塑料盒中,于20 ℃贮藏20 d。每个处理30 个果实,重复3 次。定期观察并测定色泽、质量损失率和自然发病情况。另设相同处理的一组果实,每个处理40 个果实,重复3 次,分别于贮藏后的第5、10、15、20天定期取样用于相关生理指标的测定。

1.3.2 病情指数的测定

病情指数测定参考Ren Yanfang等[23]的方法。

1.3.3 果实色泽、硬度和质量损失率的测定

果实色泽采用色差仪在果实正反两面赤道部位测定的L*、a*和b*值表征,每组10 个果实,重复3 次。质量损失率采用称质量法,用差量法计算果实质量损失率,每组处理测定5 个果实,重复3 次。硬度测定采用GY-1型硬度计,于果实赤道附近削去果皮,选果实两面中心两点测定,每处理测定5 个果实,取平均值, 单位为kg/cm2,重复3 次。

1.3.4 可溶性固形物、可滴定酸质量分数和VC、总酚含量的测定

取10 g芒果果肉组织在冰浴下研磨成匀浆,然后4 ℃、6000×g离心15 min,取上清液,采用PAL-1手持式糖量计测定可溶性固形物质量分数;可滴定酸质量分数测定采用NaOH滴定法[23];VC含量测定采用邻菲啰啉法[23];总酚含量测定采用Folin-Ciocalteu法[25]。

1.3.5 抗氧化能力的测定

参照Odriozola-Serrano等[26]的方法测定1,1-二苯基-2-三 硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基清除能力;参照Alothman等[27]的方法测定铁离子还原能力(ferric reducing antioxidant power,FRAP)。

1.3.6 丙二醛含量、超氧阴离子自由基产生速率和H2O2含量的测定

丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量测定采用硫代巴比妥酸法[6],单位为nmol/g;超氧阴离子自由基(O2-·)产生速率测定参考Ren Yanfang等[23]的方法, 单位为μmol/(min·g);H2O2含量的测定采用四氯化钛法[6],单位为μmol/g。以上结果均以鲜质量计。

1.3.7 抗氧化酶活力的测定

超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、过氧化物酶(peroxidase,POD)、抗坏血酸过氧化物酶(ascorbate peroxidase,APX)和过氧化氢酶(catalase,CAT)活力测定参考Ren Yanfang等[23]的方法。SOD活力以抑制氮蓝四唑被光还原50%为1 个酶活力单位;POD活力以反应液每分钟在470 nm波长处吸光度变化1为1 个 酶活力单位;APX活力以反应液每分钟在290 nm波长处吸光度变化0.01为1 个酶活力单位;CAT活力以反应液每分钟在240 nm波长处吸光度变化0.01为1 个酶活力单位。以上酶活力单位均为U/g,结果以鲜质量计。

1.4 数据处理与分析

所有数据均采用3 次重复得到的平均值±标准差表示,并采用SPSS 16.0软件进行单因素方差分析和主成分分析(principal component analysis,PCA),采用Duncan法进行平均值的多重比较分析,P<0.05表示差异显著。

2 结果与分析

2.1 不同处理对贮藏芒果果实色泽和硬度的影响

图 1 SA和SNP处理对芒果果实L*(A)、a*(B)、b*(C)值 和硬度(D)的影响Fig. 1 Effects of SA and/or SNP treatments on L* (A), a* (B), and b* (C), and firmness (D) of mango fruit

色泽和硬度是评价果实成熟和软化的重要指标。L*值代表果实表面亮度,a*值代表果实红绿度,b*值代表果实黄蓝度。图1A~C表明,随着贮藏时间的延长,不同处理果实L*、a*和b*值均逐渐增加,在贮藏第20天时,SA、SNP、SA+SNP处理果实的L*、a*和b*值均显著低于CK组(P<0.05),其中SA+SNP处理组最低,L*、a*和b*值分别为CK组的92.35%、64.66%和87.71%。

由图1D可知,各处理果实硬度均随着贮藏时间的延长不断降低,其中CK组果实中硬度降低最快,在贮藏第5天比贮藏前降低了30.59%,而在贮藏20 d后,仅为贮藏前的4.23%。与CK组果实相比,SA、SNP和SA+SNP处理均明显延缓了贮藏期间芒果果实硬度的下降,在贮藏结束时,SA、SNP、SA+SNP处理组果实硬度分别为CK组的1.99、2.33、2.86 倍(P<0.05)。可见,与SA、SNP相比,SA+SNP处理更有利于延缓果实硬度下降,抑制果实软化,保持果实品质。

2.2 不同处理对贮藏芒果果实质量损失率和病情指数的影响

图 2 SA和SNP处理对芒果果实质量损失率(A) 和病情指数(B)的影响Fig. 2 Effects of SA and/or SNP treatments on mass loss rate (A) and disease index (B) of mango fruit

新鲜果实采后贮藏期间,由于机体的代谢消耗及水分散失,果实质量不断下降[28]。图2A显示,芒果质量损失率随贮藏时间的延长不断增加,CK组的质量损失率增加最快,至贮藏20 d后质量损失率已达15.25%,各处理均明显降低了果实在整个贮藏期间的质量损失,贮藏第20天,SA、SNP、SA+SNP处理果实的质量损失率比同期CK组分别低16.29%、17.97%和20.85%(P<0.05),其中SA+SNP处理对果实质量损失的抑制程度最大。

病害是导致果实腐烂及采后损失的重要原因之一。图2B显示,随着贮藏时间的延长,CK组和各处理果实 逐渐发生病害,且有不断加重的趋势,与CK组相比,SA、SNP、SA+SNP处理均明显减轻了果实病害发生的程度,在贮藏结束时,其病情指数分别为CK组的49.73%、59.48%和43.05%(P<0.05),可以看出SA+SNP复合处理对病害的抑制程度明显高于SA和SNP单独处理。

2.3 不同处理对贮藏芒果果实可溶性固形物和可滴定酸质量分数的影响

图 3 SA和SNP处理对芒果果实可溶性固形物(A)和可滴定酸(B)质量分数的影响Fig. 3 Effects of SA and/or SNP treatments on contents of total soluble solids (A) and titratable acid (B) in mango fruit

图3A显示,CK组和SA处理组芒果贮藏期间可溶性固形物质量分数表现为先增加后降低的变化趋势,其中CK组前期增加最快,至贮藏第10天达到最大值,SA处理组可溶性固形物质量分数则在贮藏后第15天达峰值。SNP和SA+SNP处理组可溶性固形物质量分数始终保持增加的趋势,在贮藏结束时其可溶性固形物质量分数均显著高于CK组(P<0.05),分别比CK组高11.24%和8.47%。

由图3B可知,随着贮藏时间的延长,芒果果实中的可滴定酸质量分数均呈现不断降低的趋势。在贮藏前10 d,可滴定酸质量分数下降幅度较大,第10天时CK组可滴定酸质量分数仅为贮藏前的21.70%,之后进入缓慢下降阶段。与CK组相比,各处理均有效延缓了可滴定酸质量分数的降低,在贮藏第10天时,SA、SNP、 SA+SNP处理组可滴定酸质量分数比CK组分别高39.13%、75.15%和65.22%。在贮藏结束时,SA、SNP、SA+SNP处理组中可滴定酸质量分数仍比CK组分别高18.11%、68.88%和75.17%。总体比较,SA+SNP复合处理对可滴定酸质量分数下降的延缓效果最明显。

2.4 不同处理对贮藏芒果果实VC和总酚含量的影响

图 4 SA和SNP处理对芒果果实VC(A)和总酚(B)含量的影响Fig. 4 Effects of SA and/or SNP treatments on contents of VC (A) and total phenols (B) in mango fruit

由图4可知,不同处理下芒果果实VC含量与总酚含量变化趋势基本一致,即随贮藏时间的延长,VC含量与总酚含量总体表现为不断降低的趋势,其中以CK组降低幅度最大,至贮藏20 d时,其VC含量与总酚含量仅为贮藏前的21.59%和61.54%,而SA、SNP、SA+SNP处理均明显延缓了VC含量与总酚含量的下降,有效地维持了其营养成分,其中以SA+SNP复合处理效果最好,贮藏结束时该组的VC和总酚含量分别是CK组的1.87 倍和1.36 倍。

2.5 不同处理对贮藏芒果果实DPPH自由基清除能力 和FRAP的影响

由图5A可知,随贮藏时间的延长,CK组芒果的DPPH自由基清除能力不断降低,SA和SNP处理果实的DPPH自由基清除能力也呈下降的趋势,但相同贮藏时间点的DPPH自由基清除能力均显著高于CK组 (P<0.05)。SA+SNP处理组DPPH自由基清除能力在贮藏的前5 d略有增加,而后逐渐下降。在贮藏第20天时,SA、SNP和SA+SNP处理组果实的DPPH自由基清除能力均显著高于CK组,较CK组分别提高了22.89%、31.33%和35.12%(P<0.05)。图5B显示采后芒果贮藏期间FRAP先增加后降低,其中SA处理组和CK组在贮藏前期增加幅度较大,至贮藏第10天时达到最大值,之后逐渐降低,但SA处理组果实在整个贮藏期间的FRAP均显著高于CK组(P<0.05)。SNP和SA+SNP处理组中 FRAP在贮藏后第15天达最大值,其值分别较CK组提高了8.13%和14.12%。在贮藏第20天时,SA、SNP 和SA+SNP处理组的FRAP分别比CK组高18.67%、32.22%和48.88%。

图 5 SA和SNP处理对芒果果实DPPH自由基清除能力(A) 和FRAP(B)的影响Fig. 5 Effects of SA and/or SNP treatments on 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical scavenging activity (A) and ferric reducing antioxidant power (B) of mango fruit

2.6 不同处理对贮藏芒果果实O2-·产生速率和H2O2 含量的影响

图 6 SA和SNP处理对芒果果实O-2·产生速率(A) 和H2O2含量(B)的影响Fig. 6 Effects of SA and/or SNP treatments on superoxide anion production rate (A) and H2O2 content (B) in mango fruit

图6A结果表明,芒果果实中O2-·产生速率随着贮藏时间的延长而逐渐增加,其中以CK组中增加最快,至贮藏 第20天时,O2-·产生速率比贮藏前高3.42 倍。然而与CK组相比,各处理均明显降低了果实中O2-·产生速率,其中以SA+SNP处理组中O2-·产生速率最低,在贮藏第20天时较CK组低26.04%。图6B结果表明,不同处理果实中H2O2含量总体表现为先增加后降低再增加的波动变化趋势。与CK组相比,SA、SNP和SA+SNP处理均明显提高了贮藏前期果实中的H2O2含量,而延缓了贮藏后期果实中H2O2含量的增加,其中以SA+SNP处理组果实中H2O2含量增加最为缓慢。

2.7 不同处理对贮藏芒果果实MDA含量的影响

图 7 SA和SNP处理对芒果果实MDA含量的影响Fig. 7 Effects of SA and/or SNP treatments on MDA content in mango fruit

MDA是植物组织或器官膜脂质发生过氧化的产物。由图7可知,SA、SNP、SA+SNP处理果实的MDA含量变化与CK组果实相似,均呈逐渐增加的趋势,但均较CK组果实增加缓慢。贮藏20 d后,SA、SNP、SA+SNP处理组果实的MDA含量较CK组分别降低了31.11%、26.09%和38.98%,说明SA、SNP、SA+SNP处理均可减轻细胞膜脂过氧化的程度,从而延缓芒果的衰老过程,且以SA+SNP处理降低效果最显著(P<0.05)。

2.8 不同处理对贮藏芒果果实抗氧化酶活力的影响

图 8 SA和SNP处理对芒果果实SOD(A)、POD(B)、CAT(C)和APX(D)活力的影响Fig. 8 Effects of SA and/or SNP treatments on SOD (A), POD (B), CAT (C) and ascorbate peroxidase (D) activities in mango fruit

图8A显示,随着贮藏时间的延长,不同处理组果实中SOD活力均表现为先增加后降低。CK组SOD活力在贮藏第10天时达最大,而SNP、SA和SA+SNP处理组中SOD活力在第15天时达峰值,至贮藏结束时,SA、SNP、SA+SNP处理组中SOD活力分别为CK组的1.29、1.44、1.50 倍,差异显著(P<0.05)。POD和CAT活力的变化趋势与SOD活力基本类似(图8B、C),SNP、SA和SA+SNP处理显著提高贮藏后期POD和CAT的活力 (P<0.05)。由图8D可知,芒果在贮藏过程中,APX活力呈先增加后略有下降的趋势,且在贮藏期间,SNP、SA和SA+SNP处理组的APX活力总体高于CK组,特别是SA+SNP处理组,在贮藏末期,较CK组提高了28.05%(P<0.05)。

2.9 芒果贮藏过程中各指标的PCA结果

通过对不同处理组芒果果实的品质、抗氧化能力和活性氧代谢相关指标进行主成分分析,结果表明,PC1和PC2分别解释了变量的71.61%和20.92%,两者的累计贡献率达92.53%(图9)。PC1可较好地将不同处理组按不同贮藏时间区分开,且SA、SNP和SA+SNP处理5 d和10 d在图中的位置相对集中,随着处理时间的延长,不仅区分了与CK组的差异,而且也将处理间的差异逐渐区分开,说明随着贮藏时间的延长,不同处理对芒果的品质及抗氧化能力存在不同的影响。PC2可进一步将贮藏15 d和20 d后不同处理组的差异区分开。

图 9 芒果果实各指标的PCA得分Fig. 9 Score plot of principal component analysis for quality attributes, antioxidant properties and ROS metabolism-related parameters of mango fruit

3 讨 论

NO和SA是植物中普遍存在的多功能活性分子,广泛参与调节果实的成熟和衰老过程及对病害的抗性反应。已有研究表明采用外源NO处理[3-7]和SA处理[8-10]能够明显延缓多种园艺产品的采后成熟衰老进程,延长果实的货架寿命,在果实贮藏保鲜中具有较好的应用前景。芒果作为呼吸跃变型果实,在采后贮藏期间极易发生果实病害引起的腐烂和品质下降,从而导致严重的经济损失。已有研究表明,外源NO或SA能够不同程度地推迟果实的呼吸或乙烯合成高峰,降低呼吸强度,抑制叶绿素分解和类胡萝卜的合成,减缓体内营养物质的代谢转换,从而提高保鲜效果[4-8]。此外,还有研究表明NO[21-22,24]或SA[29]能够通过降低细胞壁代谢酶活性维持细胞壁完整性,抑制硬度降低。本研究重点从芒果采后品质变化、抗氧化能力以及活性氧代谢角度,探讨SA和SNP复合处理对芒果贮藏期间品质和抗氧化能力的影响,结果表明采用外源SA和SNP复合处理能明显延缓采后芒果色泽转变和果实软化、抑制果实质量损失和可溶性固形物、可滴定酸质量分数变化,且效果好于单独处理,说明SA与SNP复合使用对芒果果实贮藏期间品质的维持有协同增效作用,可能与SA和SNP可抑制果实呼吸速率和乙烯合成、减少贮藏期间的糖酸消耗,并抑制果皮叶绿素分解和类胡萝卜的合成等有关[30]。该结论与张永福等[31]对葡萄的研究结论一致。

病害是导致果品采后腐烂和经济损失的重要原因。本研究表明随着芒果贮藏时间的延长,病情指数不断增加。有研究表明,NO和SA能够诱导果实对采后病害的抗性反应,减轻采后病害程度。Hu Meijiao等[21]研究表明外源NO处理能明显降低贵妃芒果贮藏期间的病害发生率,认为与NO激活果实体内抗性反应和延缓果实成熟有关。Zeng Kaifang等[32]研究表明采用外源SA处理可以通过提高抗病相关的酶如苯丙氨酸解氨酶、多酚氧化酶、几丁质酶、β-1,3葡聚糖酶以及调节活性氧水平,降低‘Matisu’芒果果实采后发病率。本课题组前期研究表明SA提高芒果果实抗病性与其直接抗菌活性和诱导抗性反应及维持果实较高的硬度有关[22]。本研究进一步证实了SA和NO在提高芒果抗病性方面的积极作用。李翠丹等[16]研究表明NO可以通过NOS合成途径参与SA诱导采后番茄果实抗病性反应,二者有交互作用。本研究结果表明 SA+SNP复合处理对芒果采后发病情况相对于单独处理有更好的抑制效果,可以推断NO和SA在提高果实抗病性方面存在协同作用,但具体机理还有待于进一步研究。

果蔬采后活性氧代谢与果蔬的耐贮性密切有关[33]。O2-·和H2O2是两种重要的活性氧物质,活性氧的累积可引发和加剧膜脂过氧化,进而造成细胞膜脂系统的损伤。通常情况下,活性氧的积累和清除受到植物体内抗氧化酶(如SOD、POD、CAT、APX等)的调控。本研究结果表明,随着贮藏时间的延长,芒果中O2-·产生速率加快,H2O2和MDA含量整体上呈增加趋势,表明采后芒果果实中活性氧平衡改变并发生了膜脂过氧化作用。这与Awad[20]、Wang Baogang[34]、洪克前[35]等在不同品种芒果中的研究结果相一致。Tareen等[36]研究表明采用SA处理可以提高贮藏期间桃子果实中SOD、POD和CAT活力,从而提高自由基清除能力,延缓果实的成熟软化和品质下降。Wang Zhen等[8]研究表明SA提高了杏果实中SOD和POD活力,但明显降低了CAT和APX活力,降低了O2-·产生速率和H2O2含量。NO处理能提高贮藏火龙果果实中SOD、CAT、APX活力,延缓O2-·产生速率和H2O2含量的增加,减少膜透性和脂质过氧化,防止火龙果细胞膜发生氧化损伤[5]。本研究结果表明SA和SNP处理可明显提高芒果贮藏后期SOD、POD、CAT和APX活性,降低活性氧的产生和积累,减轻氧化胁迫程度,延缓果实的后熟衰老,Hu Meijiao[21]、洪克前[35]等采用SNP处理芒果果实也得到类似的结果。Namdjoyan[2]、Liu Shuang[18]、Ahanger[37]等研究表明SA和NO可协同调节抗氧化酶活性,从而提高在重金属和盐胁迫下植株的抗氧化能力,减轻膜脂过氧化,改善植株生长发育。本研究也发现SA和SNP在提高芒果果实抗氧化能力上表现一定的协同效应,但其具体机制仍有待于进一步研究。此外,本研究结果表明,与CK组相比,SA和SNP可提高贮藏期间果实的内源抗氧化物质VC和总酚含量,保持较高DPPH自由基清除能力和FRAP,降低果实中O2-·产生速率和MDA含量。结合前面的品质分析结果,认为SA、SNP、SA+SNP复合处理可通过提高采后果实的抗氧化能力清除活性氧,减轻氧化胁迫和病害发生,延缓果实品质下降。PCA法是果实品质综合评价的常用分析方法。PCA结果表明随着贮藏时间的延长,芒果的品质、抗氧化能力及活性氧代谢发生明显变化。

4 结 论

与CK组相比,2 mmol/L SA 和0.25 mmol/L SNP单独或复合处理均能有效延缓采后芒果贮藏期间色泽转变和果实软化,减少果实可滴定酸质量分数的降低,延缓可溶性固形物质量分数的变化,降低果实采后质量损失和病害发生的程度,通过提高果实中抗氧化物质含量和抗氧化酶活力,增强抗氧化能力,降低活性氧的积累及减轻膜脂质过氧化,其中SNP和SA复合处理表现出协同增效的作用,二者复合处理可作为延长芒果货架时间和提高贮藏品质的潜在方法。

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