双酶水解鱼鳞蛋白制备ACE抑制肽的工艺优化研究

2022-01-21 14:52苑园园王燚欣宋晓鑫
现代农村科技 2022年1期
关键词:底物缓冲液抑制率

苑园园 刘 畅 王燚欣 宋晓鑫

(衡水学院生命科学学院 河北 衡水 053000)

现代医学研究表明,血管紧张素转化酶(An-giotensin I-converting enzyme,ACE)是导致高血压的主要因素之一[1]。ACE是人体组织和体液中发现的一种含锌的二肽羧基肽酶,能够对血压起到一定的调控作用,血管紧张素Ⅰ可以在人体内经过ACE的催化作用转化为可以使血管收缩并使血压升高的血管紧张素Ⅱ[2]。

我国水资源丰富,在鱼类产品生产加工过程中产生了很多下脚料,其中15%左右都是鱼鳞[3],据不完全统计,我国每年废弃的鱼鳞达30万t,鱼鳞中蛋白质的含量高达50%~70%[4,5],是非常好的生物资源。

目前制备ACE抑制肽多为单一蛋白酶水解,很少模拟胃肠道系统的酶解过程,而经其他酶水解得到的ACE抑制肽在人体消化吸收过程中,由于胃蛋白酶和胰蛋白酶的作用,其氨基酸序列有可能会发生变化,进而导致ACE抑制能力的变化[6]。因此本试验选取的双酶模拟胃肠道消化系统对鱼鳞的酶解作用,可能将制备出更高活性的ACE抑制肽[7]。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

1.1.1 材料。新鲜猪肺:衡水市万德福超市;新鲜鲤鱼鱼鳞:衡水市桃城区人民桥水产开发市场。

1.1.2 主要试剂。盐酸(36.0%~38.0%):烟台远东精细化工有限公司;四硼酸钠:天津市河东区红岩试剂厂;乙酸乙酯(AR):天津市大茂化学试剂厂;硼酸(AR):天津市红岩化学试剂厂;胰蛋白酶:河南万邦实业有限公司;胃蛋白酶:河南万邦实业有限公司;马尿酰组氨酰亮氨酸:上海麦克林生化科技有限公司;甘氨酸:天津市大茂化学试剂厂。

1.2 仪器与设备。ST3100型pH计:奥豪斯仪器(常州)有限公司;BGZ-30型电热鼓风干燥箱:上海博讯实业有限公司医疗设备厂;DS-1型高速组织捣碎机:上海标本模型厂;Alpha 1-4/2-4 LD Plus德国Christ真空冷冻干燥机:北京五洲东方科技发展有限公司广州分公司;A11型研磨机:艾卡(广州)仪器设备有限公司;UV-5500型紫外可见分光光度计:上海元析仪器有限公司;TGL-16M型离心机:湖南湘仪实验室仪器开发有限公司。

1.3 方法

1.3.1 ACE粗酶的制备。新鲜的猪肺冷藏10 h左右,将黏膜、脂肪和气管切除,将切好的猪肺放入高速组织捣碎机中,之后间歇性匀浆5min,保证比例,每5g的猪肺加入6 ml的硼酸缓冲溶液(pH值8.3,0.1 mol/L),4℃,8 000 r/min离心15 min,收集上清液冷冻干燥备用[8]。

1.3.2 脱钙鱼鳞粉的制备。收集新鲜的鲤鱼鱼鳞,用清水洗净,去除非鱼鳞物质,洗净后50℃烘干2 h;将烘干后的鱼鳞用10%(w/v)NaCl溶液5℃浸泡24 h,换液1次[9],50℃烘干2 h;干燥后的鱼鳞用0.4 mol/L的HCl溶液以料液比为1∶15(w/v)浸泡90 min进行脱钙[10],用清水洗净后再次放入烘箱50℃烘干2 h,放入研磨机打碎得到鱼鳞粉冷藏备用。

1.3.3 鱼鳞酶解物的制备。取适量脱钙鱼鳞粉溶于酶的缓冲液中,调节整体的pH值在酶的最适范围内,加酶进行酶解,当酶解反应完成后应立即沸水浴15 min,保证酶彻底失活,待整个反应体系冷却后离心15 min(10℃,4 000 r/min),取上清液[11]。

1.3.4 ACE抑制率测定。本次试验采用紫外分光光度法[12]测定ACE抑制率,取酶解物上清液作为ACE抑制肽,将马尿酰组氨酰亮氨酸(hippuryl-histidyl-leucine,HHL)溶于0.1 mol/L(pH值8.3,含Na-Cl)的硼酸盐缓冲液配成浓度为12.5 mmol/L的底物,先取50μL底物于1.5 ml离心管中,再加入20μLACE抑制肽,两者混匀后放入水浴锅37℃保持5 min,接着再取40μLACE溶液于离心管中,放入水浴锅37℃保持30 min,最后加入200μLHCl(1 mol/L)终止整个反应,离心管中加入1 ml预冷过的乙酸乙酯,混合后放入离心机4 000 r/min离心15 min,吸取上层澄清液体750νL到试管中,烘箱内120℃烘干15 min,使溶剂全部挥发,冷却后向试管中加入3 ml的蒸馏水以溶解试管中的马尿酸,混匀1 min后用紫外可见分光光度计在波长为228 nm下测定溶液的吸光值,计算公式:ACE抑制率(%)=×100%;式中:A为加入ACE抑制剂的吸光度;B为ACE与HHL反应的吸光度;C为空白反应的吸光度。

1.4 胃蛋白酶提取条件的单因素试验及正交试验优化1.4.1单因素试验。称取5份脱钙后的鱼鳞粉,料液比分别为1∶10(g/ml)、1∶15(g/ml)、1∶20(g/ml)、1∶25(g/ml)、1∶30(g/ml),利用胃蛋白酶缓冲液调节pH值为2.0,温度控制在37℃,分别调节胃蛋白酶的添加量在2%、4%、6%、8%、10%的条件下,酶解1 h、2 h、3 h、4 h、5 h,以ACE抑制率为评价指标,考察酶解时料液比、胃蛋白酶的添加量、酶解时间对鱼鳞ACE抑制率的影响。

1.4.2 正交试验优化。根据单因素试验结果,设计L9(34)的正交试验,见表1。

表1 胃蛋白酶酶解脱钙鱼鳞粉正交试验因素水平表

1.4.3 胰蛋白酶提取条件的单因素试验优化。利用胰蛋白酶缓冲液将胃蛋白酶酶解液pH值调节为8.0,温度控制在40℃,分别调节胰蛋白酶的添加量在2%、4%、6%、8%、10%的条件下,酶解1 h、2 h、3 h、4 h、5 h,以ACE抑制率为评价指标,考察酶解时料液比、胰蛋白酶的添加量、酶解时间对鱼鳞ACE抑制率的影响。

2 结果与分析

2.1 胃蛋白酶酶解的单因素试验结果分析

2.1.1 酶的添加量对酶解产物ACE抑制率的影响。如图1,当胃蛋白酶添加量增高,ACE抑制率升高,酶的添加量达到6%时,ACE抑制率最高,酶的添加量继续增加,抑制率反而降低。当酶过少时,酶与底物结合的几率很小,抑制率较低,加酶量到达一定程度时,酶与反应体系中的底物全部结合,抑制率达到最大值,但加酶量过多时就会影响底物与之结合,从而导致抑制率降低。因此,酶的添加量为6%时,鱼鳞蛋白的酶解产物ACE抑制率最高,为57.6%。

图1 不同胃蛋白酶的添加量下酶解产物的抑制率

2.1.2 料液比对酶解产物ACE抑制率的影响。如图2,料液比增大的同时ACE抑制率也增大,当增加到1∶40时达到最大,随后抑制率降低。当料液比高时,酶解体系比较浓稠,ACE抑制率降低[13]。因此,当料液比为1∶40时,鱼鳞蛋白的酶解产物ACE抑制率最高,为67.18%。

图2 不同料液比下酶解产物的抑制率

2.1.3 酶解时间对酶解产物ACE抑制率的影响。如图3,酶解开始时,ACE抑制肽逐渐释放其活性,ACE抑制率随酶解时间的增加而升高,酶解时间为2 h时ACE抑制率最高,时间持续过长则会适得其反,ACE抑制肽会被酶解丧失活性,ACE抑制率降低[14,15]。因此,当水解时间为2 h时,鱼鳞蛋白的酶解产物ACE抑制率最高,为79.7%。

图3 不同酶解时间下酶解产物的抑制率

2.2 胃蛋白酶酶解鱼鳞蛋白正交实验优化。由表2可知,料液比、酶的添加量、酶解时间这3个因素对ACE抑制率都会产生影响,在9个试验结果中,以试验2、试验8、试验9的结果最好,ACE抑制率基本达到70%以上,最佳方案为A1B3C2,即料液比1∶50,酶的添加量4%,酶解时间2 h,该组合并未出现在正交表中,所以进行验证试验,在此条件下,经3次平行试验后测得ACE抑制率为84.89%。通过比较R值可以看出,酶解时间对ACE抑制率的影响最显著。由表3的F值大小可看出,这3个因素的影响主次顺序为:C>B>A。

表2 胃蛋白酶酶解脱钙鱼鳞粉正交试验结果数据

表3 胃蛋白酶酶解脱钙鱼鳞粉正交试验结果方差分析

2.3 胰蛋白酶酶解的单因素试验结果分析

2.3.1 酶的添加量对酶解产物ACE抑制率的影响。如图4,酶的添加量较少时,酶与底物结合机会较少,形成的产物较少;ACE抑制率随着加酶量的增加而升高,酶的添加量增加到一定程度而底物不变时,酶可以与底物完全结合,酶的添加量达到6%时,ACE抑制率最大;再增加胰蛋白酶的添加量时,可能会因为反应体系已饱和而降低酶与底物的结合率导致ACE抑制率逐渐降低。因此,当酶的添加量为6%时,鱼鳞蛋白的酶解产物ACE抑制率最高,为92.13%。

图4 不同酶的添加量下酶解产物的抑制率

2.3.2 酶解时间对酶解产物ACE抑制率的影响。如图5,当酶解时间过长时,产生的活性产物可能会被酶解,导致抑制率下降。当酶解时间为2 h时鱼鳞蛋白的酶解产物ACE抑制率最高,为93.37%。

图5 不同酶解时间下酶解产物的抑制率

3 结论与讨论

以脱钙后的鲤鱼鱼鳞蛋白为原料,通过单因素试验及正交试验证明,以胃蛋白酶酶解脱钙鱼鳞粉制备ACE抑制肽,当酶的添加量8%、料液比1∶50(g/ml)、酶解时间2 h时,ACE抑制率为84.89%。以胰蛋白酶酶解脱钙鱼鳞粉制备ACE抑制肽,当酶的添加量为6%、酶解时间为2 h时,ACE的抑制率为93.37%。结果表明先用胃蛋白酶酶解,再用胰蛋白酶进行酶解,最终得到的ACE抑制肽不会受人体胃肠道的影响。

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