花卉植物组织培养试管苗出瓶种植技术

王钊

（大庆油田生态环境管护公司，黑龙江 大庆 163000）

0 引言

在现代科学技术持续发展的背景下，业内对花卉植物组织培养技术的研究正在不断深入。但目前业内对花卉植物组织培养试管苗出瓶种植方面缺少研究，导致试管苗的成活率受到严重影响。因此为解决上述问题，未来需要不断研究，从选择优质试管苗、炼苗、避免菌类滋生等角度出发，以提高出瓶种植的科学性，防止死苗现象发生，该点对保证经济效益具有重要意义。

1 试管苗出瓶种植的重要性

植物组织培养技术属于常见技术，其目前已趋向于成熟，且正朝广阔领域延伸。在当前的花卉培育中，植物组织培养技术的应用对培育成功率具有直接影响。正式进行植物组织培养时，需要对外植体进行合理选择，展开灭菌消毒操作，并以无菌环境为基础，在培养基内对外植体进行放置，以进行培养。在此基础上，外植体将受到附近温度与激素的积极影响，从而发育成完整试管苗。在完成上述操作后，操作人员需要通过多项手段对试管苗进行诱导，保证其能够健康生长。

在深入分析植物组织培养技术后，可发现其主要包括5 个阶段。目前业内在研究该项技术手段的过程中，多会将外植体生长与分化诱导阶段、中间繁殖体增殖阶段视作重点研究对象，未深入研究出瓶种植与苗期管理过程，且有部分人员未对该阶段的重要性形成正确认知。对于试管苗出瓶种植与苗期管理阶段，其在植物组织培养技术中具有重要地位，且是决定小苗能否健康生长的重要因素，若操作人员未对该阶段进行严格管控，将直接影响试管苗，致使其存活的可能性减少，导致人力资源与物力出现浪费。例如，试管苗在生长过程中，处在的环境属于无菌条件，具有良好的温度与光照条件，且能够持续供给营养，可通过激素对生长代谢方面进行调控，实现健康生长，而在进行出瓶移植后，其有可能因生长环境出现剧烈转变，温度、湿度适宜性下降，从而导致死苗现象发生[1]。因此需要提高对试管苗出瓶种植的关注度，认识到该阶段的重要性，并进行严格管控，以积极影响试管苗成活率。

2 花卉植物组织培养试管苗出瓶种植技术的要点

2.1 选择优质试管苗

为提高试管苗的移栽成活率，必须对优质健壮的试管苗加以重视，确保试管苗在完成移植操作后粗壮，茎基部颜色健康，根系状况良好。例如，移植的目标属于木本植物，需要对其采取相应措施，略微实现木质化，促使根系与茎的维管束保持互相连通，禁止由愈伤组织中间发生。为确保各项要求能够得到满足，应提高对壮苗生根培育的关注度。

首先，需要科学选取小苗，确保选取的目标具有嫩叶，并对小苗采取分离措施，使其成为单苗或小苗丛，转移至培育基内，保证小苗能够停止增殖，并迅速生根成长，进而为后续移栽提供保障。在通常情况下，2～4 周内即能够生根，生长出正常短根。许多植物在培育方面进行1 次即可，仅在条件特殊时，需要转接1～2 次培养基，常见的有非洲菊、大岩桐等。另有部分生长细弱的植物在生根培养前必须适当增加壮苗流程，促使苗长粗壮，以便于后续诱导生根，提高移植成活率，在该种状况下采用的培养基多是不具有激素的1/2 MS 培养基。

其次，壮苗生根在通常情况下需要对1/2 或1/4 量的MS 培养基进行使用，不使用细胞分裂素或仅使用少量，并加入一定程度的生长素，进而促进生根，提升存活率。针对根系较细，且属于丛生的植物，可选择对“液体浅层静置培养”进行使用。该种培养基的优势呈现多样化，例如清洗难度较低，能节省时间与人力，且培养苗较为粗壮，根系发达，能防止移栽与清洗过程中对根系造成不良影响，有效节省琼脂，提升成本节省效果。

最后，需要对培养基中的糖分进行控制，增强光照强度。在通常情况下，糖的含量需要减少50%，光照条件需要优化，例如，强度应提升至少3 倍，至多5 倍，以此才能强化小苗的光合作用，防止其对异样条件产生依赖，增强试管苗的抗逆能力。此外，虽然组培苗在部分状况下将出现生长缓慢的现象，但在展开调查工作后，可发现其成活率显著优于其他小苗。在完成生根培育操作后，小苗将在各项操作的作用下，转变成再生植株。在部分状况下，小苗可能暂时未实现生根，但较为粗壮，满足无根扦插相关要求。在此基础上，作业人员即可出瓶种植。

2.2 炼苗

对于试管苗培养室，其营养、湿度、光照等条件均能够满足试管苗具有的各项需求，若立即进行出瓶移栽，则试管苗有可能因环境转变较快，从而无法适应环境，导致死苗现象发生[2]。因此为解决上述问题，在出瓶移栽前，作业人员有必要展开时间为3～15d 的炼苗操作，以确保试管苗能够适应环境，进而提高成活率。具体操作方法如下：正式进行移栽操作前，需要明确选取的培养瓶与试管苗，并将二者移出培养室，放置到洁净明亮，且具备良好通风性的环境中，放置时间不得少于7d。在此基础上，将实现在保障营养与湿度的前提下促使小苗在瓶内适应外界环境。在完成上述操作后，需要取下瓶塞进行炼苗，在通常情况下应持续2～3d，以此才能进行移栽。

2.3 合理选择种植介质

从整体的角度出发，可发现种植介质的选择对试管苗移栽成活率具有决定性作用。在深入分析种植介质后，可发现其包括的类型较多，不同类型均具有不同的适用范围。应用的介质必须具备以下特征：①疏松通气。②具备良好的保水性。③灭菌处理难度较低。④能够对杂菌滋生产生抑制作用。对于上述条件，疏松通气的重要性较强，若种植介质不具备该特征，则试管苗根部有可能出现腐烂现象，致使死苗现象发生。因此目前应用率较高的种植介质如下：蛭石、炉灰渣、珍珠岩、锯木屑等，上述种植介质多数能够独立使用，还能依照一定比例进行混合使用，其中应用率较高的是珍珠岩与蛭石混用。在展开移栽操作的过程中，作业人员需要对自身经验进行充分结合，以此选择适宜的种植介质，对文心兰种植介质进行选择时，可同时选取苔藓、珍珠岩、朽木屑、纸箱屑、蛭石等不同介质进行对比，进而选取效果优异的种植介质，如朽木屑与苔藓。

在种植介质方面，作业人员不仅需要对物理结构进行考量，而且还要对pH 进行科学调节，例如，山茶花pH 需要控制在5.4 左右。对于不同植物，需要将种植介质pH 调整成不同数值，以此对成活率产生积极影响，但通过实践可以发现，多数植物要求pH 中性偏酸。

2.4 避免菌类滋生

培养瓶中属于无菌环境，但在试管苗移植后，无菌条件将难以维持，导致试管苗的成活受到一定影响。因此为防止菌类大量滋生，需要对细菌与真菌污染进行严格管控。为实现上述目标，应参考以下内容。

首先，在试管苗出瓶时，考虑到培养基营养丰富，滋生杂菌的可能性较高，故而操作人员应对附着的培养基进行仔细清洗。在清洗过程中，操作人员必须保持耐心与谨慎，防止伤害试管苗，致使其伤口较多或根部受到损伤，进而造成死苗。此外，由于创口滋生细菌的可能性较大，故而在清洗过程中应保持谨慎，不得使用水管直接冲洗，应使用温度适宜的清水进行漂洗，且水温应符合要求，保证手感舒适。

其次，在分苗过程中，应对小丛进行适当分离，无须全部分离成单苗。在完成上述操作后，操作人员可选择在移栽成活后，逐次将试管苗分植成单苗。在试管苗清洗操作结束后，应在低浓度杀菌剂中对根部进行浸泡，浸泡时间应处在1～2s 的范围内，并在阴凉处晾晒试管苗，在通常情况下，晾晒时间应控制在1～2h 内。在小苗晾干后，操作人员才能进行移栽[3]。

再次，需要对栽培环境加以重视，确保其具备良好的整洁性，杂菌数量较少。在展开对试管苗的移栽操作前，操作人员需要落实对种植介质的灭菌处理措施。在灭菌处理方面，高压灭菌具有良好成效，但其费力费时，因此在条件允许的情况下，可通过锅炉房蒸汽达到灭菌的目的。如条件不允许，可采用化学灭菌法，进而提高灭菌效果。

最后，在完成试管苗移栽操作后，需要通过喷雾器对浓度为800～1000 倍液的灭菌剂进行喷淋。为提高菌类滋生抑制效果，操作人员最好每7d 左右即喷淋1次，以防止试管苗成活率受到菌类滋生的影响。

2.5 保证水分供应

水分条件能够在一定程度上影响移栽小苗的成活率，且对部分植物成活具有决定性作用，因此需要提高对水分供应的重视程度。在培养瓶中，由于湿度较大，普遍处在100%，故而多数瓶中小苗缺少角质层，难以应对水分流失，且根系状况较差，导致其对后续水分供给的要求提高。因此需要加强水分供给，但不得过多，防止小苗根部出现积水现象，致使根部通气不畅，导致烂根现象发生。

为实现对水分供给具有的矛盾进行有效处理，必须提升小苗生长环境周围空气的湿度，保证其不小于90%，进而保证小苗能够保持挺拔状况。在上述过程中，能够采用的方法呈现多样化，例如若通过苗盘种植，可选择对塑料薄膜进行加盖或罩上玻璃瓶，并定时通过喷雾器进行喷雾；若选择在温室内苗床上进行种植，需要对湿度计进行设置，并安装人工喷雾设备，以确保叶面空气湿度符合要求。在通常情况下，植物需要处在高湿度环境中，否则将导致成活率下降，但也有部分植物对水分条件的要求较低，如仙人掌[4]。对于其他小苗，则需要将空气湿度控制在90%左右，尽可能营造与培养瓶内相似的生长环境，以确保小苗能够始终保持挺拔状态。在实际操作中，若个别实验材料较为珍贵，可选择以湿滤纸为基础放置小苗，以此为根毛的生长提供保障，并通过灭菌剂进行处理，移植到消毒介质中，进而提高水分利用率，防止试管苗出现死苗现象。

2.6 注重移栽季节与光温条件

在培养瓶中，小苗将持续得到营养供给，并具备充足糖分，以满足碳源需要，大致属于异养。但在出瓶移植后，小苗需要通过自身才能正常生长，因此应为小苗发挥自身的光合作用创造条件，改善光照，避免直射光，并使用强度较高的漫射光。应避免光照过强，防止植物的蒸腾作用加强，导致水分平衡矛盾呈现尖锐化，致使脆弱的叶片损坏，导致叶片颜色呈现病态，小苗的成活率下降。操作人员需要对植物种类进行综合考量，依照苗的壮弱等因素对光的强度进行考虑，适当遮阴，以提高小苗的成活率。在太阳光照较为强烈的情况下，应通过遮阴网进行遮阴。

在培养室中，温度普遍处在恒定状态，因此试管苗将健康生长，但在出瓶移植后，温度将出现转变，导致试管苗成活率受到影响。为解决上述问题，有必要考虑温度条件，保证温度适宜。例如，对于喜温植物，应将温度控制在25℃左右；对于喜凉植物，应将温度控制在20℃左右。在控制温度时，应防止其过高或过低，若温度较高，可能导致蒸腾增强，造成水分平衡性下降，致使菌类滋生无法得到控制；若温度较低，可能导致试管苗生长速度下降，致使成活率降低。试管苗普遍较为娇嫩，如操作人员对其进行移植时，未综合考虑风雨可能对试管苗产生的影响，必将导致试管苗成活率下降，因此需要在无风区域对试管苗进行移栽，并在展开移栽操作的初期，落实保护措施，防止外部因素损害小苗，导致移栽损失发生。此外，考虑到能够管控温度的温室大棚成本较高，故而需要对移栽季节加以重视，合理选择季节，在通常情况下应在春秋季进行移栽。若必须在冬季移植，则需要通过塑料薄膜进行覆盖，以提高温度，避免对试管苗成活率产生影响。在夏季时，非必要情况不得进行移植。

出瓶移植后的前10d 是决定试管苗移植是否成功的重要时期，因此在移植后的10d 内，需要对试管苗实际状况进行紧密关注，并在发现问题时立即采取处理措施。在10d 后，若试管苗各方面均正常，即代表试管苗基本可成活。此外，在完成出瓶移植后，作业人员必须做好对试管苗的后期管理工作[5]。在管理过程中，应在移植后的2 周进行施肥，参考无土栽培法对营养液进行自主调配或直接使用1/2 MS 培养基大量元素的水溶液，通过喷雾器进行喷淋，每周喷淋1 次。若试管苗生长正常，且在15d 左右长出新根，萌发幼芽，即代表试管苗可成活。

3 结语

综上所述，对花卉植物组织培养技术进行应用时，需要提高对试管苗出瓶种植技术的关注度，并通过科学选择试管苗、进行炼苗、谨慎选取种植介质、控制菌类滋生及合理选择移栽季节等方法，以此减少外部环境因素对试管苗产生的影响，提高试管苗的成活率，进而防止经济损失发生。