银杏叶黄酮及多糖超声波辅助提取工艺优化

景年华，史俊友，安仙香，刘超颖

（1.曲靖师范学院 生物资源与食品工程学院，云南 曲靖 655011；2.曲靖师范学院 化学与环境科学学院，云南 曲靖655011）

银杏科（Ginkgoaceae）植物银杏（Ginkgo bilobaL.）为落叶乔木，被誉为植物界的活化石［1］。据记载，银杏叶性平、味甘苦，具有活血化瘀、通络止痛、敛肺平喘、化浊降脂之功效［2］；现代研究表明，银杏叶有效成分包括黄酮类、多糖类等活性物质，具有保护神经系统、改变血液流变学、免疫调节、抗衰老、抗氧化、抗炎、抗肿瘤、降血脂等生物活性［3-8］。因此，开展提高黄酮含量以利用银杏叶药用价值为目标的提取工艺优化具有重要现实意义。多种癌细胞活性受黄酮类化合物抑制，例如肺癌细胞、乳腺癌细胞。Jiang等［9］研究发现木犀草素，对A549细胞及H460 细胞均有抑制增殖及诱导凋亡的作用，H460 裸鼠移植瘤模型中发现木犀草素显著抑制了肿瘤生长，同时发现木犀草素对非小细胞肺癌具有显著肿瘤抑制活性作用。类黄酮可抑制卵巢癌细胞自噬，改善细胞凋亡，从而在抵抗卵巢癌中发挥作用［10］。黄酮类化合物具有较好的抗炎作用，有实验表明白簕植物黄酮提取物可有效抑制角叉菜胶诱发的大鼠脚趾肿胀［11］。二甲苯诱导小鼠耳朵肿胀实验表明，黄酮可有效降低肿胀程度［12］。黄酮具较高抗氧化活性，银杏叶黄酮是天然植物抗氧化剂，可有效清除机体自由基［13］，并有效消除人体内氧化生成的各种不饱和脂类自由基、蛋白质自由基，避免人体细胞及组织氧化损伤，同时有证据表明黄酮类化合物对猪油自氧化有明显的抑制作用［14］。

近年来，银杏叶多糖在免疫调节、抗氧化、抗肿瘤等方面的活性不断被发现，具有十分可观的药用价值及潜在的医药开发前景［15-18］。多糖广泛存在于植物、动物及微生物组织中［19］。人类对其初始研究可追溯到1936 年对多糖抗肿瘤活性的发现［20］。至50 年代，陆续发现一些真菌多糖和高等植物多糖具有明显的抑瘤活性［21］，随着研究的进一步深入，人们发现多糖还具有增强免疫力、抗肝炎、降血糖、降血脂、抗衰老、抗病毒病菌、消炎、缓解疲劳等作用［15-18］。天然多糖因其独特的功能和很低的毒性，已成为天然药物学和保健食品学的研究热点。它既是寻找高效天然无毒副作用药物的有效途径，也是保健功能因子的研究项目之一。

目前，关于银杏叶多糖类化合物及黄酮类化合物的提取方法主要集中于水提醇沉法、酶解法、超声波法、微波法及其相互间的技术联用等，且提取时仅仅集中于其中一种有效成分的提取［13，22，23］。利用超声波产生的空化作用迅速破裂细胞，使黄酮类化合物及多糖类化合物在超声波热效应下更易溶解，缩短了提取时间，增加了提取率及原料利用率。常波等［24］应用超声波辅助萃取所得植物总黄酮的得率最高，且操作简单。基于超声波辅助萃取法的优点，本文在单因素试验的基础上，对银杏叶黄酮及多糖提取工艺进行了优化，旨在通过超声辅助萃取法提取银杏黄酮及多糖有效成分，为银杏叶相关保健产品的开发提供数据支撑。

1 材料与仪器

1.1 材料与试剂

银杏叶采自云南曲靖。使用试剂为无水乙醇、亚硝酸纳、氢氧化钠、浓硫酸、苯酚等均为分析纯。芦丁标准品：成都埃及生物科技有限公司；葡萄糖标准品：国药集团化学试剂公司。

1.2 仪器与设备

DHG-9245 型电热鼓风干燥箱：上海一恒科学仪器有限公司；SK3200LHC 超声波清洗仪：上海科导超声仪器有限公司；SHZ-DIII 循环水式真空泵：巩义予华仪器有限责任公司；XA-1 高速万能粉碎机：金坛市白塔金昌实验仪器厂；CP214 电子天平：奥豪斯仪器上海有限公司；TU-1810 紫外可见分光光度计：北京普析通用仪器有限责任公司。

2 实验方法

2.1 银杏叶总黄酮提取工艺优化

2.1.1 实验流程

银杏叶清洗→干燥→粉碎→准确称取一定质量银杏叶→以不同浓度乙醇为提取溶剂超声辅助提取总黄酮→抽滤→紫外可见分光光度法测其黄酮含量

2.1.2 芦丁最大吸收波长λmax的确定

准确量取1.00 mL 芦丁标准溶液（0.1 mg·mL-1）置于10 mL 比色管中，依据姜洪芳等的方法［25］，显色后，用无水乙醇定容至10 mL，摇匀，于300～600 nm波长范围进行光谱扫描，得光的吸收曲线及最大吸收波长λmax。

2.1.3 芦丁标准曲线的绘制

分别量取芦丁标准溶液（0.1 mg·mL-1）0.00 mL、0.50 mL、1.00 mL、1.50 mL、2.00 mL、2.50 mL、3.00 mL、3.50 mL 于10 mL 比色管中，如2.1.2 所述显色后，于波长λ = 389.1nm 处测定其吸光度值A。以芦丁标准品质量（mg）为横坐标，吸光度值A 为纵坐标绘制标准曲线。

2.1.4 银杏叶黄酮最大吸收波长λmax的确定

准确称取5 g 银杏叶干燥粉末，设定超声功率（100 W），超声持续时间（40 min），超声温度（35℃），提取溶剂（75%乙醇），料液比（1 ∶ 20 g·mL-1），对银杏叶黄酮进行超声提取。超声提取后，抽滤得滤液，滤液稀释后依据2.1.2 所述实验方法显色，于340～800 nm 波长范围进行光谱扫描，得光的吸收曲线及银杏叶黄酮显色后最大吸收波长λmax。

2.1.5 单因素试验

2.1.5.1 料液比对银杏叶黄酮提取率的影响

分别准确称取5 g银杏叶干燥粉末5份，设定超声功率（100 W），超声持续时间（40 min），超声温度（35℃），提取溶剂（75%乙醇），通过改变料液比即料液比分别为1 ∶ 10 g·mL-1、1 ∶ 20 g·mL-1、1 ∶ 30 g·mL-1、1 ∶ 40 g·mL-1、1 ∶ 50 g·mL-1进行单因素试验。超声提取后，抽滤得滤液，滤液显色后测定吸光度值A，代入标准曲线，计算黄酮提取率。

2.1.5.2 乙醇浓度对银杏叶黄酮提取率的影响

分别准确称取5 g 银杏叶干燥粉末5 份，设定超声功率（100 W），超声持续时间（40 min），超声温度（35℃），料液比（1 ∶ 20 g·mL-1），通过改变提取溶剂即55%乙醇、65%乙醇、75%乙醇、85%乙醇、95%乙醇进行单因素试验。超声提取后，抽滤得滤液，滤液显色后测定吸光度值A，代入标准曲线，计算黄酮提取率。

2.1.5.3 提取超声时间对银杏叶黄酮提取率的影响

分别准确称取5 g 银杏叶干燥粉末5 份，设定超声功率（100 W），超声温度（35℃），料液比（1 ∶20 g·mL-1），提取溶剂（85%乙醇），通过改变超声时间即40 min、50 min、60 min、70 min、80 min 进行单因素试验。超声提取后，抽滤得滤液，滤液显色后测定吸光度值A，代入标准曲线，计算黄酮提取率。

2.1.5.4 提取超声功率对银杏叶黄酮提取率的影响

分别准确称取5 g 银杏叶干燥粉末5 份，设定超声温度（35℃），料液比（1 ∶ 20 g·mL-1），提取溶剂（85%乙醇），超声时间（50 min），通过改变超声功率即100 W、200 W、300 W、400 W、500 W 进行单因素试验。超声提取后，抽滤得滤液，滤液显色后测定吸光度值A，代入标准曲线，计算黄酮提取率。

2.1.6 正交试验

据2.1.5 实验结果，以黄酮提取率为考察指标，选择影响黄酮提取率的4 个因素即料液比、乙醇浓度、超声时间、超声功率进行4 因素3 水平L9（43）正交实验。正交因素水平见表1。

表1 银杏叶黄酮提取正交实验因素水平表Tab.1 Orthogonal experimental factors and levels of extraction of flavonoids from leaves of Ginkgo biloba

2.2 银杏叶多糖提取工艺优化

2.2.1 银杏叶多糖提取流程

银杏叶清洗→干燥→粉碎→准确称取一定质量银杏叶→超声辅助提取多糖→离心→抽滤→醇沉（80%乙醇醇沉）→离心（对醇沉所得白色絮状多糖进行2次离心）→洗涤、烘干→粗多糖→配制粗多糖溶液→苯酚-硫酸法测定多糖含量。

2.2.2 葡萄糖最大吸收波长λmax的确定

准确量取0.00 mL、1.00 mL 葡萄糖标准溶液（1 mg·mL-1）于10 mL 比色管中，分别加入蒸馏水补足体积至2 mL，摇匀，利用苯酚-硫酸法显色，于300～600 nm 波长范围内进行光谱扫描得光的吸收曲线及最大吸收波长λmax以用于后续实验［26］。

2.2.3 葡萄糖标准曲线的绘制

分 别 准 确 移 取0.00 mL、0.20 mL、0.40 mL、0.60 mL、0.80 mL、1.00 mL、1.20 mL 葡萄糖标准溶液（1 mg·mL-1）于比色管中，按2.2.2 所述操作显色后，于波长λ = 490 nm 处测定吸光度值A。以葡萄糖质量（mg）对吸光度值A 进行线性回归，得葡萄糖标准曲线。

2.2.4 银杏叶多糖最大吸收波长λmax的确定

准确称取5 g 银杏叶干燥粉末，以水为提取溶剂，设定超声温度（45℃），料液比（1 ∶ 20 g·mL-1），超声功率（500 W），超声时间（40 min），对银杏叶多糖进行超声提取。超声提取后，经醇沉、离心、洗涤烘干得粗多糖。配置0.2 mg·mL-1粗多糖溶液，依据2.2.2所述实验方法显色，于400～800 nm波长范围进行光谱扫描，得光的吸收曲线及银杏叶多糖显色后最大吸收波长λmax。

2.2.5 单因素试验

2.2.5.1 超声时间对银杏叶多糖提取率的影响

设定超声温度（45℃），料液比（1 ∶ 20 g·mL-1），超声功率（500 W），通过改变超声时间即20 min、30 min、40 min、50 min、60 min 进行单因素试验。超声后，4000 r/min离心10 min，收集上清液，残渣同前重复提取1 次，合并2 次提取上清液，抽滤，滤液醇沉、离心、洗涤烘干得粗多糖。准确称取0.0100 g 粗多糖，定容至50 mL 得0.2 mg·mL-1粗多糖溶液。粗多糖溶液显色测其吸光度值A，代入标准曲线，计算多糖提取率。

2.2.5.2 超声功率对银杏叶多糖提取率的影响

设定超声温度（45℃），料液比（1 ∶ 20 g·mL-1），超声时间（40 min），通过改变超声功率即100 W、200 W、300 W、400 W、500 W进行单因素试验。超声后4000 r/min 离心10 min，收集上清液，残渣同前重复提取一次，合并上清液抽滤，滤液醇沉、离心、洗涤烘干得粗多糖。配制0.2 mg·mL-1粗多糖溶液、显色测其吸光度值A，代入标准曲线，计算多糖提取率。

2.2.5.3 超声温度对银杏叶多糖提取率的影响

设定超声时间（40 min），料液比（1 ∶ 20 g·mL-1）超声功率（300 W），通过改变超声温度即20℃、30℃、40℃、50℃、60℃进行单因素试验，超声后4000 r/min 离心10 min，收集上清液，残渣同前重复提取一次，合并上清液抽滤，滤液醇沉、离心、洗涤烘干得粗多糖，配制粗多糖溶液（0.2 mg·mL-1），显色后测其吸光度值A，代入标准曲线，计算多糖提取率。

2.2.6 正交实验设计

据2.2.5 单因素试验结果，以银杏叶多糖提取率为考察指标，以超声时间、超声功率、超声温度为因素进行3 因素3 水平L9（33）正交实验。正交实验因素及水平见表2。

表2 银杏叶多糖提取正交实验因素水平表Tab.2 Orthogonal experimental factors and levels of extraction of polysaccharides from leaves of Ginkgo biloba

3 结果与分析

3.1 最大吸收波长的λ max确定

于波长300～600 nm 范围内进行光谱扫描，芦丁显色后光的吸收曲线于389.1 nm 处有最高峰，即λmax= 389.1 nm；葡萄糖显色后吸收曲线于490 nm处有最高峰，即λmax= 490 nm。另外，于波长340～800 nm及400～800 nm 处分别对显色后银杏叶黄酮及多糖进行光谱扫描，光吸收曲线见图1。由图1可知显色后银杏叶黄酮及多糖λmax分别为397.5 nm、487.5 nm，与标准品芦丁及葡萄糖显色后λmax相近，依据文献［27-30］，往往选择标准品显色后最大吸收波长进行含量测定，故后续对黄酮及多糖含量测定时，分别选择芦丁显色后λmax（389.1 nm）及葡萄糖λmax（490 nm）进行测定。

图1 银杏叶黄酮和多糖的光吸收曲线Fig.1 Spectral absorption curves of flavonoids and polysaccharides from leaves of Ginkgo biloba

3.2 银杏叶总黄酮提取工艺优化

相关研究表明［31，32］，在冷冻条件下总黄酮含量相对稳定，随着温度的升高，总黄酮含量降低速率逐渐增加，充分考虑到总黄酮这一性质，总黄酮提取时考虑超声温度对银杏叶总黄酮提取的影响，实验结果如图2所示，超声温度在35～45℃范围内黄酮提取率逐渐降低，超声温度为45℃时，提取率达最小值19.62 mg·g-1；超声温度在45～50℃范围内，随着超声温度增大，黄酮提取率上升，超声温度为55℃时，黄酮提取率有所下降；超声温度为35℃，银杏叶黄酮提取率达最大值22.26 mg·g-1。因此，银杏叶总黄酮超声提取时，超声温度选择相对较低温度35℃，尽可能降低温度对总黄酮含量的影响。实验时，选择料液比、乙醇浓度、超声时间及超声功率4个因素进行银杏叶总黄酮提取工艺优化。

图2 超声温度对银杏叶黄酮提取率的影响Fig.2 Effect of ultrasonic temperature on the extraction of flavonoids from leaves of Ginkgo biloba

3.2.1 芦丁标准曲线的绘制

以芦丁质量（mg）为横坐标，吸光度值A 为纵坐标进行线性回归，得线性方程为Y = 3.087 9 X +0.193，R2= 0.999 1，芦丁质量在0.05 ～ 0.35 mg 范围内呈良好线性关系。实验结果如图3所示。

图3 芦丁标准品标准曲线Fig.3 Rutin standard curve

3.2.2 黄酮提取单因素试验

3.2.2.1 料液比对银杏叶黄酮提取率的影响

由图4 可知，料液比在1 ∶ 10 ～ 1 ∶ 20 g·mL-1范围内黄酮提取率逐渐增加，料液比为1 ∶ 20 g·mL-1时，提取率达最大值28.14 mg·g-1；料液比在1 ∶ 20 ～1 ∶ 50 g·mL-1范围内，随着提取溶剂体积增大，黄酮提取率逐渐下降，料液比为1 ∶ 50 g·mL-1时提取率降至26.89 mg·g-1。这可能是料液比为1 ∶ 10 ～ 1 ∶20 g·mL-1时，溶剂用量未达到饱和，所以黄酮提取率随着溶剂用量的增加而增大。继续增加溶剂用量，其他可溶性杂质提取量增加，黄酮得率反而降低。所以1 ∶ 20 g·mL-1为银杏叶黄酮提取最佳料液比。选取料液比1 ∶ 10 g·mL-1、1 ∶ 20 g·mL-1、1 ∶30 g·mL-1进行正交试验。

图4 料液比对银杏叶黄酮提取率的影响Fig.4 Effect of solid-liquid ratio on the extraction of flavonoids from leaves of Ginkgo biloba

3.2.2.2 乙醇浓度对银杏叶黄酮提取率的影响

由图5 可知，乙醇浓度为55% ～ 85%时，银杏叶黄酮提取率随乙醇浓度的增大而增大，乙醇浓度为85%时，提取率达最大值达47.20 mg·g-1；乙醇浓度为95% 时，黄酮提取率有所降低，提取率为43.53 mg·g-1。主要原因可能是黄酮类化合物具有广泛极性，当溶液极性过高或过低时，会减少黄酮类化合物的溶解，导致总黄酮提取率降低。所以银杏叶黄酮提取以乙醇为提取溶剂，其浓度为85%。

图5 乙醇浓度对银杏叶黄酮提取率的影响Fig.5 Effect of ethanol concentration on the extraction of flavonoids from leaves of Ginkgo biloba

3.2.2.3 超声时间对银杏叶黄酮提取率的影响

超声时间对银杏叶黄酮提取率的影响见图6，随着超声时间的延长，黄酮提取率呈先增大后降低的趋势。超声时间在40 ～ 50 min 范围内，黄酮提取率随时间增加随之增大，超声时间为50 min 时，黄酮提取率最大，为47.64 mg·g-1。超声时间在50 ～80 min 范围，黄酮提取率下降， 80 min 时提取率下降至30.12 mg·g-1。主要原因可能是超声时间会影响提取的传质过程，超声时间过短，传质不能达到平衡，其提取率偏低，超声时间适宜，传质达到基本平衡，提取率最佳，超声时间过长，多种杂质溶解，溶液黏度增大，黄酮溶出受阻，同时部分黄酮苷水解，提取率随之降低。所以银杏叶黄酮最佳超声时间为50 min。

图6 超声时间对银杏叶黄酮提取率的影响Fig.6 Effect of ultrasound time on the extraction of flavonoids from leaves of Ginkgo biloba

3.2.2.4 超声功率对银杏叶黄酮提取率的影响

超声功率在100～400 W 范围内，黄酮提取率随超声功率的增大不断增加，超声功率为400 W 时，黄酮提取率最大，为34.90 mg·g-1。超声功率在400～500 W 范围内，黄酮提取率随超声功率的增大而下降，超声功率为500 W 时，黄酮提取率降至32.84 mg·g-1。原因可能为超声功率为100～400 W时，银杏叶黄酮分子运动加速从而使黄酮提取得率增大，当超声功率 ＞ 400 W 时，可能由于超声波空化效应及机械效应［33］，引起黄酮类物质分解，所以黄酮提取率出现下降。因此，最佳超声提取功率为400 W（图7）。

图7 超声功率对银杏叶黄酮提取率的影响Fig.7 Effect of ultrasonic power on the extraction of flavonoids from leaves of Ginkgo biloba

3.2.3 正交实验分析

由表3 黄酮提取率极差可得，超声波辅助提取银杏叶黄酮类化合物的影响因素依次为A（料液比） ＞ D（超声功率） ＞ B（乙醇浓度） ＞ C（超声时间）。由正交试验结果可得，银杏叶黄酮最佳提取工艺为A2B3C3D1，进行验证实验（n = 3），得黄酮的提取率为37.50 mg·g-1，高于其它各正交实验值，确定该提取工艺稳定性好，可行性高。因此，确定银杏叶黄酮提取最佳工艺条件为，料液比为1 ∶20 g·mL-1，乙 醇 浓 度 为95%，超 声 持 续 时 间 为60 min，超声功率300 W。

3.3 多糖提取工艺优化

银杏叶多糖提取时，如图8 所示，料液比在1 ∶15 ～ 1 ∶ 20 g·mL-1范围内，多糖提取率逐渐增大，料液比为1 ∶ 20 g·mL-1时，多糖提取率最大，提取率为50.08 mg·g-1，料液比在1 ∶ 20 ～ 1 ∶ 35 g·mL-1范围内，多糖提取率呈下降趋势，最低值达40.35 mg·g-1。料液比对银杏叶多糖提取的影响相较于超声时间、超声功率及超声温度对多糖提取率的影响较小，因此实验时，选择超声时间、超声功率及超声温度3个因素进行银杏叶多糖提取工艺优化。

图8 料液比对银杏叶多糖提取率的影响Fig.8 Effect of solid-liquid ratio on the extraction of polysaccharide from leaves of Ginkgo biloba

3.3.1 葡萄糖标准曲线的建立

以葡萄糖质量（mg）对吸光度值A 做线性回归，得标准曲线方程Y = 1.685 8 X - 0.021 3，R2=0.999，标准曲线如图9所示。

图9 葡萄糖标准曲线Fig.9 Glucose standard curve

3.3.2 单因素实验

3.3.2.1 超声时间对银杏叶多糖提取率的影响

超声时间对多糖提取率的影响见图10。超声时间在20～40 min 范围内，多糖提取率逐渐升高，当时间为40 min时，多糖提取率最大，提取率为43.70 mg·g-1，超声时间 ＞ 40 min时，多糖提取率呈下降趋势，超声时间达60 min 时，多糖提取率降至13.70 mg·g-1。主要原因可能是超声时间过长，较多杂质溶出从而使溶出物浓度差降低，影响多糖溶解，且因超声时间过长部分多糖水解，导致银杏叶多糖提取率下降。因此多糖最佳超声时间为40 min。

图10 超声时间对银杏叶多糖提取率的影响Fig.10 Effect of ultrasound time on the extraction of polysaccharide from leaves of Ginkgo biloba

3.3.2.2 超声功率对银杏叶多糖提取率的影响

超声功率对银杏叶多糖提取的影响见图11。超声功率在100 ～ 300 W范围内，多糖提取率持续增大，多糖提取率为16.10 ～ 28.00 mg·g-1。超声功率为300 W 时，多糖提取率达最大值，为28.00 mg·g-1。超声功率 ＞ 300 W 时，随着超声功率的增大，杂质溶出，溶液黏度增大，降低了多糖类物质的溶出，导致多糖提取率降低，其提取率下降至22.00 mg·g-1。因此，银杏叶多糖最佳超声功率为300 W。

图11 超声功率对银杏叶多糖提取率的影响Fig.11 Effect of ultrasonic power on the extraction of polysaccharide from leaves of Ginkgo biloba

3.3.2.3 超声温度对银杏叶多糖提取率的影响

超声温度对银杏叶多糖的影响见图12。温度影响分子扩散，随着提取温度的升高，分子运动加快。因此，温度的升高加快了溶剂分子在细胞内的运动。超声温度在20～60℃范围内，随着提取温度的升高，多糖提取率不断增大，当温度达到60℃时，多糖提取率为32.60 mg·g-1。因此，选取超声温度为60℃进行银杏叶多糖提取。

3.3.3 正交实验分析

由表4 银杏叶多糖提取率极差可知，超声波辅助提取银杏叶多糖，各因素对银杏叶中多糖提取影响由大到小排列依次为为A（超声时间） ＞ C（超声温度） ＞ B（超声功率）。正交试验最优组合为A2B1C2，在此工艺条件下，银杏叶多糖的提取率平均值为48.98 mg·g-1，提取率均高于其他正交试验，因此，银杏叶多糖最佳提取工艺为即超声时间40 min、超声功率为200 W、超声温度为50℃。

表4 银杏叶多糖超声提取工艺优化正交实验Tab.4 Orthogonal design of optimization of ultrasonic assisted extraction of polysaccharides from leaves of Ginkgo biloba

4 讨论

银杏叶有效成分包括黄酮类、多糖类等活性物质，具有保护神经系统、改变血液流变学、免疫调节、抗衰老、抗氧化、抗炎、抗肿瘤、降血脂等生物活性。因此，开展提高黄酮含量及多糖含量以利用银杏叶药用价值为目标的提取工艺优化具有重要现实意义。以银杏叶为原料，结合超声波辅助提取法，利用单因素试验及正交试验研究不同因素对银杏叶黄酮及多糖提取率的影响以确定银杏叶最佳黄酮及多糖提取工艺条件，建立了银杏叶黄酮及多糖有效成分超声波辅助提取工艺。研究结果表明，银杏叶黄酮提取时，料液比为1 ∶ 20 g·mL-1、提取溶剂为95%乙醇、超声时间为60 min 及超声功率为300 W 时，黄酮的提取率为37.50 mg·g-1， 提取率最大。超声波辅助提取银杏叶多糖时，其最佳提取工艺为超声时间40 min、超声功率200 W 及超声温度50 ℃，在此条件下，银杏叶多糖提取率为48.98 mg·g-1。银杏叶易于获得，且其黄酮类化合物和多糖含量较高，对其提取工艺进行优化，可为银杏叶相关保健产品的开发提供数据支撑。