朱智勇 马颖才 唐 莉 荣光宏 (青海省人民医院消化科,青海 西宁 810007)
研究表明,缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)以及己糖激酶-Ⅱ(HK-Ⅱ)在体内的高表达能够有效抑制肿瘤细胞的糖酵解,起到良好的抗癌作用〔1〕。本研究分析不同氧浓度对HIF-1α及HK-Ⅱ表达的影响,并观察HK-Ⅱ的表达与乳酸分泌之间的联系,探讨HIF-1α及HK-Ⅱ在肿瘤缺氧耐受机制中的作用。
1.1 实验材料 人食管鳞状细胞癌细胞株TEl3和Ecal09,其中TEl3/shRNA细胞为 TEl3的HIF-1α稳定干扰株,Ecal09/shRNA细胞为Ecal09的HIF-1α稳定干扰株。逆转录酶试剂盒、细胞培养箱和缺氧培养箱、定量PCR仪、紫外分光光度仪以及乳酸浓度测定试剂盒、TRIzol、SYBR Green I RT-PCR Master Mix等。
1.2 方法
1.2.1 培养及分组 常规细胞培养。首先将细胞放置于胎牛血清的DMEM培养液内,待细胞生长至60%融合时取出,饥饿24 h。之后更换培养液,可以为无血清培养液。对细胞进行分组,观察组采用1%氧浓度,对照组采用20%氧浓度。观察两组细胞培养24、48 h后的HIF-1α及HK-Ⅱ表达情况。
1.2.2 实时定量PCR 利用TRIzo1提取总RNA,然后使用RT-PCR试剂盒进行逆转录,之后使用SYBR Green荧光染料进行实时定量 PCR扩增,反应条件为50℃ 5 min,95℃ 3 min,95℃ 20 s,60℃ 1 min,55个循环,每个循环结束后测定吸光度(A)值。随着PCR系统在每一个循环结束后测定A值,得到以循环数为横坐标、A值为纵坐标的定量曲线。
1.2.3 分光光度法测定乳酸浓度 取细胞培养上清液以分光光度法测定乳酸浓度。空白管加蒸馏水0.02 ml,标准管加3 mmol/L标准液0.02 ml,测定管加样本0.02 ml,各管中均加入酶工作液1 ml及显色剂0.2 ml,混匀后37℃水浴反应10 min,各管加终止液2 ml。混匀,530 nm,1 cm 光径,蒸馏水调零,分光光度仪测各管A值,根据空白管、标准管及测定管的A值计算得出细胞培养上清液的乳酸浓度(mmol/L)。……