雌激素质谱筛查分析方法的研究

2015-01-17 07:16史艳艳刘庆生范志影秦玉昌
饲料工业 2015年24期
关键词:雌酚雌二醇乙腈

■史艳艳 刘庆生 范志影 李 俊 秦玉昌

(1.天津市兽药饲料监察所,天津 300402;2.中国农业科学院饲料研究所,北京 100081;3.农业部食物与营养发展研究所,北京 100081)

饲料中添加激素类物质可以促进家畜的生产力,降低动物死亡率,缩短动物饲养周期,促进动物性产品产量的增长,具有稳定的增产效果。这些雌性激素在人体内富集会造成人体内分泌紊乱,儿童受到的危害尤其大。常见的雌性激素有雌二醇、雌三醇、雌酮、炔雌酮、苯甲酸雌二醇、己烯雌酚、己二烯雌酚和染料木素等多种,其中染料木素属植物雌激素。建立上述8种雌激素简便高效的分析方法是非常必要而且有意义的工作。

根据文献报道,己烯雌酚、己烷雌酚、双烯雌酚等的雌激素分析方法主要分为HPLC法[1]、GC-MS法[2]、荧光法[3]、LC-MS/MS法[4-6]、酶联免疫分析法(ELISA)[7-8]等。其中HPLC法的灵敏度较低、排除干扰能力差,难以满足低残留限量的检测要求;GC-MS法需要衍生,前处理过程繁琐,并且衍生效率对结果的准确度影响大;酶联免疫分析法灵敏度高,但难以对多组分化合物进行同时测定;LC-MS/MS抗背景干扰能力强,分辨率较高、灵敏度高、选择性好,常用于痕量检测,并且同时具备定性定量能力。常见的激素或抗生素多以液相色谱-质谱联用技术分析,采用除色谱保留时间外,两次选择(MRM模式)有效排除色谱同流出物质,并且同一方法中可同时实现多种(>100种)化合物的分析。液相色谱-质谱联用技术是目前有毒有害物质,包括雌性激素在内的化合物的常见分析方法。但针对雌二醇、雌三醇、雌酮、炔雌酮、苯甲酸雌二醇、己烯雌酚、己二烯雌酚和染料木素等8种化合物同时检测的LC-MS/MS定性法尚未见报道。本文着力于建立一种样品前处理简单、灵敏度高、适用范围广且能够同时检测上述8种雌激素类的方法。

1 实验部分

1.1 仪器和设备

Nexera UHPLC LC-30A超高效液相色谱仪(日本岛津公司)、API 3200质谱仪(AB SCIEX公司)、超声波水浴(宁波海曙超声仪器公司)、AB204-E型电子分析天平(METTLER公司)、RH2000离心机(湖北湘宜有限公司)、涡旋振荡器(美国IKA公司)、纯水仪(美国密立博公司)。

1.2 试剂与药品

甲醇(色谱纯)、乙腈(色谱纯)、甲酸铵(色谱纯)、氯化钠(分析纯)、亚铁氰化钾(分析纯)、乙酸锌(分析纯)、正己烷(分析纯)、乙酸(分析纯)、雌二醇、雌三醇、雌酮、炔雌酮、苯甲酸雌二醇、己烯雌酚、己二烯雌酚:纯度>98%,均购自德国Dr.Ehrenstorfer公司。染料木素:纯度≥98%,上海源叶生物科技有限公司,批号:KA0412CB13。

1.3 标准溶液的制备

标准品用少量乙腈溶解,色谱纯乙腈定容配制1 mg/ml标准储备液,混合均匀后密封冷冻保存。根据需要将标准储备液稀释至1 μg/ml标准工作液,4℃下保存,使用前纯水稀释一系列浓度的标准溶液。

1.4 仪器参数

1.4.1 质谱条件

利用电喷雾离子源(ESI),采用MRM多反应监测。负离子模式下(ESI-):喷雾电压(IS)-3 500 V,雾化气(GS1)40 ml/min,气帘气(CUR)30 ml/min,辅助加热气(GS2)65 L/min,离子源温度(TEM)550℃,碰撞气6 ml/min,4种气体均为氮气;Q1和Q3均为单位分辨率;正离子模式下(ESI+):喷雾电压(IS)+5 000 V,雾化气(GS1)55 ml/min,气帘气(CUR)20 ml/min,辅助加热气(GS2)65 L/min,离子源温度(TEM)550℃,碰撞气6 ml/min,4种气体均为氮气;Q1和Q3均为单位分辨率。8种雌激素的质谱优化条件见表1。

表1 MRM监测模式下8种雌激素的质谱优化条件

1.4.2 色谱条件

色谱柱:Kinetex2.6 C18柱(100 mm×2.1 mm,2.6 μm);进样量:20 μl;流动相A为乙腈,流动相B为5 mM乙酸铵溶液,进行梯度洗脱。梯度洗脱:0~2 min,维持20%A;2~4 min,20%A线性变化至60%A;4~5 min,60%A线性变化至70%A;5~6 min,70%A线性变化至95%A;6~6.1 min,维持95%A;6.1~8 min,维持20%A。

1.5 样品处理

称取1.0 g(精确至0.001 g)饲料样品,置于50 ml具塞塑料离心管中,加入2 ml蒸馏水,待饲料浸润后再加入18 ml甲醇,涡旋混匀1 min,振荡10 min,10 000 r/min离心5 min,取上清液,加入20 ml正己烷,涡旋,振荡10 min,10 000 r/min离心5 min,取下层液体,旋转蒸发溶剂,蒸干后用20%乙腈水溶液2 ml溶剂,过0.2 μm滤膜,上机分析[9-10]。

2 结果与讨论

2.1 实验条件的优化选择

2.1.1 质谱条件的优化

为获得最佳的电离方式,采用流动注射泵连续进样方式进行质谱条件的优化,分别将上述8种雌激素于正、负离子模式下进行全扫描,以选择适当的电离方式和分子离子峰。结果表明雌二醇、雌三醇、雌酮、炔雌酮、己烯雌酚和己二烯雌酚在负离子[M-H]-模式下响应值高,苯甲酸雌二醇和染料木素在正离子[M+H]+模式下响应强度最高。根据欧盟2002/657/EC指令[11]规定,于质谱验证方法必须达到4个验证点的要求,在确定母离子的基础上选择两个或两个以上子离子。在确定上述8种雌激素的母离子后,采用子离子扫描对子离子进行优化选择,通过优化离子源参数以及去簇电压、出口电压、碰撞能量等质谱参数,使每种雌激素的离子化效果达到最佳。

2.1.2 色谱条件的优化

2.1.2.1 色谱柱的选择

选择实验室已有Kinetex2.6 C18柱(100 mm×2.1 mm,2.6 μm)、Dionex Aalaim120 C18(3 mm×150 mm,3 μm)、Agilent XDB-C18(3 mm×100 mm,3.5 μm)、Phoenix Luna C18(2.0 mm×150 mm,3 μm)4种色谱柱,按照相同梯度、相同浓度采集样品,得到不同的分离度及信号响应。

通过对比,4种色谱柱中Kinetex C18信号响应最高(见图1),峰型尖锐,峰型较对称,且出峰速度快,节省溶剂。因此本研究采用Kinetex C18作为分离柱。

图1 Kinetex C18柱负离子模式下6种化合物信号响应

2.1.2.2 流动相的选择

将8种雌激素在同一方法中进行分析,不在有机相中添加甲酸、乙酸等酸性或氨水等增强电离的化合物,只能选择甲醇、乙腈等常规溶剂配合甲酸铵或乙酸铵使用。一般地,乙腈和甲醇均可作为洗脱液,本研究根据实验习惯,选择乙腈作为洗脱液。在相同含量下,5 mM甲酸铵和5 mM乙酸铵进行对比,使用5 mM乙酸铵时信号略强,整体无太大差距,本研究根据实验室检测习惯,使用乙酸铵增强电离能力。

通过选择不同的液相梯度,得到不同的保留时间和信号强度,分别按照不同初始有机相比例和有机相变化速度设定不同的方法,详细数据见表2。

表2 不同初始有机相比例流动相列表

随着初始有机相比例的降低,色谱峰分离效果越好,保留时间略微偏后,灵敏度增加较为明显。初始的有机相比例低,色谱柱保留效果好,对应的分离度增加。图2中可见,设置条件c时,色谱峰峰型尖锐,分离度好且响应值最高,此时流动相比例最为合理。由表2可知,采用初始有机相比例20%,保持2.0 min,随后增加有机相比例,在4.0 min时达到60%;继续增加有机相比例,在5.0 min时达到70%;继续增加到5.1 min时设置95%;稳定1 min;6.1 min降为20%,维持2.0 min结束。因此,选择乙腈和5 mM乙酸铵作为流动相进行梯度洗脱。

图2 c流动相条件下的色谱图

2.2 样品前处理的选择

仪器方法优化成功后,筛选前处理方法。文中采用典型的几种提取、净化方法用于处理饲料及其相关产品,利用空白基质加标分别添加相当于10 ng/ml标准溶液到饲料和生鲜乳中,以期得到一种简单快速、环境友好的实验方法。

2.2.1 乙腈提取法

称取1.0 g(精确至0.001 g)样品,置于50 ml具塞塑料离心管中,添加10 ml乙腈,涡旋混合均匀后超声波提取15 min,离心机高速离心,过0.2 μm滤膜,上机分析。

2.2.2 液液萃取法

称取1.0 g(精确至0.001 g)饲料样品,置于50 ml具塞塑料离心管中,加入2 ml蒸馏水,待饲料浸润后再加入18 ml甲醇,涡旋混匀1 min,振荡10 min,10 000 r/min离心5 min,取上清液,加入20 ml正己烷,涡旋,振荡10 min,10 000 r/min离心5 min,取下层液体,旋转蒸发溶剂,蒸干后用20%乙腈水溶液2 ml溶剂,过0.2 μm滤膜,上机分析。

2.2.3 固相萃取法

称取1.0 g(精确至0.001 g)样品,置于50 ml具塞塑料离心管中,加入pH值为5.0的乙酸-乙酸钠缓冲溶液10 ml、酶解液50 μl,于37℃水浴振荡器中酶解12 h后取出,冷却至室温,加入20 ml甲醇超声提取15 min,10 000 r/min离心10 min,上清液转入100 ml鸡心瓶中,残渣再以15 ml甲醇提取1次,10 000 r/min离心10 min,合并2次的上清液。向上清液中加入10 ml正丙醇,于45℃旋转蒸发至残液基本为水时(约10 ml),加入1 ml甲醇超声混匀后上LC-C18固相萃取柱,并以适量体积分数的10%甲醇水溶液洗涤鸡心瓶,洗涤液一并上LC-C18固相萃取柱。以5 ml 10%的甲醇溶液淋洗后抽至近干,下端接已用5 ml甲醇活化的LC-NH2柱,以8 ml 90%的甲醇洗脱。洗脱液于50℃下N2吹干,加入1 ml 80%的甲醇溶液,旋涡混匀1 min,超声2 min溶解,过0.2 μm滤膜,上机分析。

对比上述三种前处理方法,得到的结果见表3。从结果中看出,回收率最好的为液液萃取法,其次为乙腈提取法,而固相萃取法回收率最差。实际固相萃取法回收率虽然不高,但是净化效果好,得到的上机液较为纯净,分析结果受基质影响小。由于固相萃取法操作复杂,容易在分析过程中,因为步骤繁琐导致人为错误进而影响分析结果。所以在实验中,优先采用液液萃取法前处理方法。

表3 前处理回收率(%)

2.3 标准曲线及重现性

2.3.1 标准曲线

逐步稀释8种雌激素标准溶液,得到一系列浓度,逐个采集数据,每个浓度重复3次。分别稀释到0.005、0.01、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0、20.0 ng等12个梯度,采集数据后,按照1/X2权重计算,浓度与峰面积归一计算法,采集MRM数据外标法定量,得到8种雌激素的校正曲线。数据表明,8种雌激素在0.5~50 ng/ml范围内有良好的线性关系,相关系数R2>0.99。这里以雌二醇和苯甲酸雌二醇为例(见图3),展示校正曲线范围和线性。

图3 雌二醇标准曲线

2.3.2 重现性实验

分别选取苜蓿和生鲜乳作为基质,验证方法准确性。取空白基质添加0.05、0.5、1.0 μg/kg 3个添加水平上(见图4和图5),每个水平重复5次得到的平均回收率在67.2%~103.4%之间(见表4),相对标准偏差在0.39%~5.97%之间(见表5)。除雌三醇外,表4中展示的重现性基本满足实验室80%~120%的需求。表5中展示相对标准偏差的数据,可见重现性良好,实验结果准确度高,适合实验室日常定量检测。

图4 生鲜乳中添加8种雌激素负离子模式总离子流图

图5 苜蓿中添加8种雌激素正离子模式总离子流图

表4 不同添加水平下不同雌激素的回收率(%)

表5 不同添加水平下不同雌激素的重现性(%)

2.4 灵敏度(见图6)

图6 部分化合物在0.1 ng/ml时的S/N

逐步稀释雌激素的上机浓度达到最低检出限,按照S/N>3计算,8种雌激素在0.005 ng/ml时接近LOD,设定为8种雌激素的最低检出限。按照S/N>10计算,8种雌激素最低定量下限为0.01 ng/ml。图6中展示部分化合物根据国家标准要求最低检出限0.1 ng/ml时的S/N。

实验数据表明,以上分析方法得到的灵敏度非常高,能够满足分析饲料类样品的灵敏度要求。

3 结论

本研究通过对仪器的质谱条件和色谱条件的优化,以及样品前处理方法的选择,建立了雌二醇、雌三醇、雌酮、炔雌酮、苯甲酸雌二醇、己烯雌酚、己二烯雌酚和染料木素等8种激素的多残留高效液相色谱-串联质谱的分析方法,用生鲜乳和苜蓿验证检测,得出该方法分析时间短,重现性好,实验结果准确度高,检出限低,节约成本,提高了检测效率。该分析方法可用于对生鲜乳和饲料中激素类物质的摸底排查。

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