一例猪细小病毒病的诊治报告

石治华　杨晓天

摘要：猪细小病毒病严重危害养猪业健康发展，本文通过发病情况、病理变化、实验室检测等几方面，介绍了一例猪细小病毒病的诊治情况，旨在为兽医临床工作者提供参考。

关键词：猪细小病毒；诊治

1967年，猪细小病毒病（porcineparvovirusinfection，PPI）最早发生于英国，随后呈世界性分布。致病原为细小病毒科、细小病毒属，可凝集鸡、豚鼠和人O型红细胞，凝集豚鼠红细胞效果最好。病毒对环境抵抗力非常强，56℃48h后，致病原的传染性和凝集红细胞的能力无明显改变。工作浓度的漂白粉和氢氧化钠5min内可杀死病毒，可用于猪场的环境消毒，预防猪细小病毒病的流行发生。

猪是猪细小病毒（porcineparvovirus，PPV）的唯一已知宿主，不同阶段的家猪和野猪都可感染，初产母猪最为易感。一般呈地方流行或散发。猪场一旦有该病发生，病原很难清除，可持续多年发病。病毒可通过污染的食物和环境，经呼吸道、消化道感染公猪、育肥猪和母猪等，病毒可通过胎盘垂直感染给仔猪。该病发生具有一定的季节性，每年4-10月份为多发生时期。在怀孕早期感染的母猪，其胚胎死亡率可高达80%～100%。2015年7月作者成功通过临床症状和实验室检测确诊了一例猪细小病毒病，并进行成功治疗，现将诊治过程总结如下，旨在为一线兽医工作者提供借鉴和参考。

1 发病情况介绍

广西省内一养殖户，存栏猪200余头。7月5日，初产母猪发生流产、死胎等情况，而母猪没有什么临床症状。同一猪场的经产母猪也未出现症状。流产母猪，可见母猪有轻度子宫内膜炎发生，并有胎儿在子宫内被溶解和吸收的症状。该猪场未免疫过猪细小病毒疫苗。

2 剖检变化及实验室检测

对死胎进行剖检，眼观多数死胎有皮下充血或水肿，胸、腹腔积有淡红或淡黄色渗出液。肝脾等实质器官肿大发暗。取病变实质性器官进行实验室检测。

无菌采取的病变组织后直接涂片、染色，镜检未发现有细菌；同时进行血琼脂平板培养，37℃培养24h后未发现有细菌增殖，排除了该病由细菌引起。所取的病变组织进行碾磨，反复冻融处理后、进行核酸提取及行RCR/RT-PCR扩增检测，在病变得组织中检测到PPV的核酸物质（见图1），而在其他组织均未检测到乙型脑炎病毒、蓝耳病毒、猪瘟病毒、猪伪狂犬病毒等病毒的核酸物质。

3 诊断结果

根据动物发病的临诊症状，剖检变化及实验室检测结果。在病变组织中，用特异性PCR引物扩增到了，PPV的核酸物质（约260bp），因为该猪场未免疫猪细小病毒疫苗，检测结果证明该猪场发生了由PPV引起的猪细小病毒病。

4 小结

1）猪细小病毒病严重危害养猪业健康发展，疫苗免疫是控制本病流行和发生最有效的手段之一。发病猪场发病前未免疫过疫苗，该病目前尚无特效治疗方法，杜绝带毒猪进入猪场，控制环境卫生，及时接种疫苗，增强猪的免疫抵抗力，是控制本病发生的关键。猪场对发病的母猪进行了及时隔离，在饲料中加入光谱抗菌类药物，作预防感染用；同时对未发病的母猪、公猪进行PPV的抗体检测，抗体阳性的猪进行了隔离。抗体阴性的母猪在配种前1个月内进行了2次疫苗免疫，时间间隔21d。经产母猪在产后2周进行的疫苗。公猪进行每年春秋2次的疫苗免疫。

2）环境控制对于有效预防猪细小病毒也十分重要，一旦猪场发生猪细小病毒病，建议淘汰发病小猪，并对猪舍的污染物、器具进行消毒，两种消毒剂轮换使用，消毒一周。带毒猪是该病重要的传染源，同时PPV对环境抵抗力相当强，所以长期有效的消毒工作是控制本病流行发生的另一个重要环节。发病猪场要每年对猪群进行春秋2次的抗体评价工作，对抗体水平低的要及时补免，补充免疫效果不好的猪要及时淘汰，只有切断一切可能的传播途径，才能真正意义上有效控制PPV的流行和发生。

（编辑：狄慧）