电针对脑缺血/再灌注模型大鼠双侧脑区IL-1β、ICAM-1表达的影响

2015-02-07 08:33宋映周孙琳琳任暎贞张旭辉许明敏于淼郭郁图娅
中国实验动物学报 2015年3期
关键词:脑区患侧脑缺血

宋映周,孙琳琳,任暎贞,张旭辉,许明敏,于淼,郭郁,图娅

(1.北京中医药大学针灸推拿学院,北京 100029;2.北京首钢医院,北京 100028)

脑血管病是人类健康大敌,当前威胁人类健康的三大疾患之一,具有发病率高、死亡率高、致残率高等特点。脑缺血炎性反应是缺血性脑损害的重要病理机制之一。脑缺血后级联式炎性反应是一个复杂的动态过程。缺血后机体处于应激状态,在缺血损伤区各种炎性因子表达增加,包括细胞因子和细胞间粘附分子。针刺对脑缺血性疾病具有良好干预作用[1],且这种干预作用贯穿于脑缺血性疾病的急性期、损伤期及恢复期。研究发现针刺百会、足三里穴对神经、内分泌-免疫调节网络具有良性调节作用,可抑制脑缺血/再灌注区的炎性反应,促进脑梗死区的神经功能恢复[2]。本实验通过对比观察不同时间大鼠健、患侧脑区IL-1β 和ICAM-1 的表达情况,进一步探讨针刺干预脑缺血性疾病的作用机制。

1 材料与方法

1.1 动物、分组和处理

SPF 级SD 大鼠,雄性,体重(275±15)g,动物来源于中国食品药品检定研究院实验动物资源中心【SCXK(京)2009-0017】。实验在中国医学科学院基础医学研究所进行【SYXK(京)2010-0021】,并按实验动物使用的3R 原则给予人道的关怀。将大鼠按随机数字表分成空白组(10 只)和造模组,造模成功(根据神经功能评分)的大鼠再随机分为模型组和针刺组,模型组和针刺组又分为12、24、48、72、96 h 和144 h 六个时程,每个时程10 只。时程的计算方法:起点为拔栓实现再灌注时间,终止点为取材时间,之间时长为各时程。空白组不做任何处理;模型组造模成功后,于每日针刺组治疗时给予抓取刺激一次;针刺组电针刺激大鼠头部百会和足三里(患侧),采用疏密波,频率2 ~100 Hz,强度2 mA,每次20 min,每日1 次,首次治疗于拔栓后30 min,末次治疗为灌注取材前150 min。

1.2 试剂和仪器

兔抗大鼠IL-1β IgG(Santa Cruz Biotechnology,批号:G2110),山羊抗兔IgG(北京中杉金桥生物技术有限公司,批号:V0602),山羊抗鼠ICAM-1 IgG(R&D system 公司,批号:EWL0109111),生物素标记的兔抗山羊IgG(北京中杉金桥生物技术有限公司,批号:W0524),辣根酶标记亲和素-HRP 连接物(北京中杉金桥生物技术有限公司,批号:V0723),DAB 显色试剂盒(北京西雅金桥生物技术有限公司),大鼠MCAO 栓线-2432、2634、2636,4A 级(北京沙东生物技术有限公司),华佗牌无菌针灸针0.30×25 mm(苏州医疗用品厂有限公司),长城牌KWD-808Ⅱ全能脉冲电针仪(常州市武进长城医疗器械有限公司),显微镜(日本Olympus 公司)。

1.3 脑缺血/再灌注损伤模型制备和神经功能评分

参照改良的Zea Longa 方法[3]制备脑缺血/再灌注损伤大鼠模型。大鼠10%水合氯醛(0.35 mL/100 g)腹腔注射麻醉后,仰卧固定,取颈部正中切口,暴露右侧颈总动脉(CCA)、颈外动脉(ECA)、颈内动脉(ICA),结扎并切断ECA 后,由ECA 残端沿ICA 缓慢插入栓线,此时栓线完全阻塞大脑中动脉入口。缺血后2 h 进行再灌注,麻醉动物,缓慢轻拉栓线,大鼠清醒后自由进食水和食物。

参照改良的Bederson 5 级评分法[4]。0 级(计0分):无功能缺损;1 级(计1 分):不能完全伸展左前肢;2 级(计2 分):左前肢屈曲,向左侧推动时阻力下降;3级(计3 分):爬行时向左侧转圈;4 级:不能自发行走,意识丧失,包括24 h 内死亡;剔除评级为0 级和4 级的大鼠。

1.4 指标检测与方法

免疫组化法检测双侧脑组织中IL-1β 和ICAM-1含量。用10%水合氯醛麻醉大鼠,切开胸腔,充分暴露心脏,依次用生理盐水和4%多聚甲醛灌注300 ~400 mL,取脑组织置于4%多聚甲醛中,4℃保存。切取视交叉前后2 ~3 mm 的脑组织截面,制备冰冻切片。检测时采用枸橼酸修复液,微波炉中微波热修复10 ~15 min,用PBS 冲洗2 次,加一抗(兔抗大鼠IL-1β,山羊抗大鼠ICAM-1)室温孵育48 h;PBS 冲洗3 次,加二抗,室温孵育2 h;加生物素-酶,室温孵育30 min;PBS冲洗3 次,DAB 显色,中性树胶封固,二甲苯擦拭玻片。

1.5 数据的读取与分析

在光学显微镜下对标本的健侧和患侧皮质、纹状体相关脑区进行分析和图像采集,分别观察相关脑区IL-1β、ICAM-1 的表达情况,使用医学图像分析软件进行图像密度比对,检测积分光度值(integrated optical density,IOD)。

1.6 统计学处理

使用SPSS 17.0 软件进行数据分析,数据用均数±标准差(±s)表示。服从正态分布,方差齐时,各组间比较采用单因素方差分析(One-way ANOVA);服从正态分布,方差不齐,采用t 检验;不服从正态分布,采用非参数检验。以α=0.05 作为检验标准。

2 结果

2.1 神经功能评分

正常组大鼠无神经功能缺损表现,模型组(在模型制备过程中死亡率为28.8%)大鼠随着存活时间的延续,神经功能评分有降低趋势,96、144 h 的评分与造模后比较有极显著性差异(P <0.01)。

表1 模型组大鼠各时程造模后与取材前神经功能评分比较Tab.1 Comparison of the neurofunctional scores of the rats in the model group during the time course after modeling

2.2 各组大鼠脑组织IL-1β 变化趋势比较

脑缺血/再灌注损伤后,模型组健、患侧脑组织IL-1β 表达均高于正常组,且呈典型双峰模式。健侧在12 h 到达第一峰峰值,至48 h 小幅下降后又持续增高,在144 h 到达第二峰峰值;患侧在48 h 到达第二峰峰值,72 h 短暂下降后又持续增高。48 h 时,患侧明显高于健侧(P <0.05),而96、144 h 时IL-1β 表达又明显低于健侧(P <0.05)。针刺组健、患侧脑组织的IL-1β 均在24 h 到达第一峰峰值,之后迅速下降,至144 h 到达第二峰峰值,但患侧的第一峰峰值和第二峰峰值均低于健侧(P <0.05)。除第24 h,针刺组健侧高于模型组健侧(P <0.05),其余时间点均低于模型组健侧(P <0.05);针刺组患侧在各时间点的IL-1β 表达均显著低于模型组患侧(P <0.05)。见表2,见图1。

表2 各组大鼠健、患侧脑组织中IL-1β 的IOD 值比较(±s,n=10)Tab.2 Comparison of the IL-1β values between bilateral brain tissues of the rats in in each group

表2 各组大鼠健、患侧脑组织中IL-1β 的IOD 值比较(±s,n=10)Tab.2 Comparison of the IL-1β values between bilateral brain tissues of the rats in in each group

注:#:与空白组比较P <0.05;△:与模型组健侧比较P <0.05;▲:与模型组患侧比较P <0.05,□:与针刺组健侧比较P <0.05。Note.# P <0.05,vs.control group;△P <0.05,vs.model group healthy side;▲P <0.05,vs.model group affected side;□P <0.05,vs.acupunture group healthy side.

组别Groups 12 h 24 h 48 h 72 h 96 h 144 h空白组Control group 158268.03±31433.72 158268.03±31433.72 158268.03±31433.72 158268.03±31433.72 158268.03±31433.72 158268.03±31433.72模型组健侧Model group healthy side 319807.71±97115.86#263859.30±18863.82#240213.46±108386.47#338739.89±130629.53#418094.09±82264.77#470523.51±32894.01#患侧Model group affected side 279250.51±65430.68#284544.8±77287.66#340476.88±84865.46#△270354.62±24252.11#323688.62±71031.85#△391050.44±95572.07#△针刺组健侧Acupunture group healthy side 239633.38±40715.95△398421.28±45902.22△256400.21±71303.38 233507.35±55078.68△219471.50±98511.13△260347.54±50688.53△患侧Acupunture group affected side 191513.48±32696.92▲200794.00±66092.71▲□166092.71±35070.34▲□183753.24±64289.76▲192891.96±58550.56▲209295.24±29807.97▲□

图1 不同时间点大鼠患侧脑组织IL-1β 免疫组化图(×100)Fig.1 Expression of IL-1β in affected side brain tissues at different time points in the rats of each group.Immunohistochemical staining,×100.

2.3 各组大鼠脑组织ICAM-1 变化趋势比较

脑缺血/再灌注损伤后,模型组健、患侧脑组织ICAM-1 表达均呈现双峰模式,在24 h 到达第一峰峰值,之后迅速下降,至72 h 又呈上升趋势,在144 h 时达到第二峰峰值。模型组健、患侧的两个峰值均高于正常组(P <0.05),且在48 h 时,患侧的ICAM-1 表达高于健侧(P <0.05)。针刺组健、患侧脑组织ICAM-1 表达也均呈现双峰模式,在24 h 到达第一峰峰值,之后持续下降,分别在144 h 和96 h呈上升趋势,并在144 h 到达第二峰峰值。除第96 h,针刺组健侧ICAM-1 表达均高于针刺组患侧(P <0.05)。针刺组健侧在12、24 和48 h 的ICAM-1 表达均高于模型组健侧(P <0.05)。针刺组患侧在12、24、48 h 的ICAM-1 表达均高于模型组患侧(P <0.05),在144 h 时低于模型组患侧(P <0.05)。见表3,见图2。

表3 各组大鼠健、患侧脑组织中ICAM-1 的IOD 值比较(±s,n=10)Tab.3 Comparison of IOD values of ICAM-1 between bilateral brain tissue in the rats of each group

表3 各组大鼠健、患侧脑组织中ICAM-1 的IOD 值比较(±s,n=10)Tab.3 Comparison of IOD values of ICAM-1 between bilateral brain tissue in the rats of each group

注:#:与空白组比较P <0.05,△:与模型组健侧比较P <0.05,▲:与模型组患侧比较P <0.05,□:与针刺组健侧比较P <0.05。Note.#P <0.05,vs.the control group;△P <0.05,vs.the model group healthy side;▲P <0.05,vs.the model group affected side;□P <0.05,vs.acupunture group healthy side.

组别Groups 12 h 24 h 48 h 72 h 96 h 144 h空白组Control group 162304.14±38542.74 162304.14±38542.74 162304.14±38542.74 162304.14±38542.74 162304.14±38542.74 162304.14±38542.74模型组健侧Model group healthy side 159509.92±37488.98#288824.99±85352.68#147767.39±34214.72 181026.82±64548.24#273672.49±173401.83#307281.12±125453.66#患侧Model group affected side 162049.45±38542.74 248977.65±18853.59#155241.03±74295.91△202082.30±61369.86#203827.80±55309.95 335731.39±34122.78#针刺组健侧Acupunture group healthy side 402705.87±183392.23△496248.81±59003.44△347462.70±60274.80△275956.55±111158.30 272454.16±105007.53△426407.09±24300.12患侧Acupunture group affected side 234326.77±44547.28▲□287853.74±65379.62▲□234156.08±8424.30▲□207482.43±82936.51□218252.23±94233.61 301480.25±40683.47▲□

3 讨论

缺血性脑中风是常见的中风类型,其发生率约占中风总人数的60% ~80%[5]。对其损伤与修复机制的研究发现炎症反应是造成脑缺血/再灌注损伤的主要原因之一[6-7]。早期给予溶栓、抗凝治疗可有效降低再灌注损伤,但这种治疗存在严格的时间窗限制,对于长期中风患者的恢复作用不显著。近年来,大量研究表明针刺对脑缺血性疾病有良好的干预作用。本实验选取百会和足三里(患侧)对脑缺血/再灌注损伤模型大鼠进行干预。其中百会为督脉穴,督脉循行于脊里,入络脑,与脑和脊髓都有密切联系,针刺百会可以促进脑神经细胞修复。足三里为足阳明胃经合穴,阳明经为多气多血之经,手足阳明经行于四肢外侧,汇聚于头部,刺激阳明经穴可以通调气血,改善肢体功能障碍,调节大脑皮质运动中枢。有研究认为针刺百会、足三里穴能减轻缺血时脑功能损伤,通过抑制脑缺血/再灌注区的炎性反应,降低ICAM-1 表达,促进缺血区脑神经功能恢复[2]。

IL-1β 主要由神经元、血管内皮细胞、星形胶质细胞和少突胶质细胞产生。脑缺血再灌注后,IL-1β蛋白含量显著增多,其主要原因是缺血后再灌注可激活小胶质细胞和星形胶质细胞,分泌大量IL-1β,促使白细胞向缺血区浸润,导致神经元坏死[8][9][10]。ICAM-1 为免疫球蛋白超家族成员,主要表达于神经元细胞、免疫细胞、血管内皮细胞、上皮细胞和神经胶质细胞,是重要的白细胞-内皮细胞间黏附分子之一,参与细胞间、细胞与基质间的信号交换,介导细胞黏附、识别、活化、增殖、分化、炎性反应,以及损伤修复等多种病理生理功能[11]。脑缺血损伤后,炎性细胞因子IL-1β 可激活胞内信号通路,使ICAM-1 在血管内皮细胞表达增高。在黏附分子介导下白细胞与内皮细胞相互作用,白细胞变形移出血管并浸润到脑组织,导致继发性神经元死亡和梗死面积扩大[12]。

脑缺血/再灌注损伤初期(48 h 内),由炎性细胞分泌的炎性因子具有神经毒性作用,其持续时间越长、表达越多,应激损伤程度越强[13-14]。脑缺血/再灌注损伤中后期(72 -144 h),主要由胶质细胞分泌炎性细胞因子,该细胞因子具有神经保护作用,可刺激机体启动神经损伤修复功能,促进神经元存活及组织再生[15-16]。本实验中正常组大鼠脑区的IL-1β 和ICAM-1 均少量表达,主要来源于神经元细胞,与文献报道一致[17-18]。模型组大鼠患侧脑区的IL-1β 和ICAM-1 表达均呈现典型的双峰模式。脑缺血早期,强烈的应激及损伤反应导致炎性细胞因子表达增高。脑缺血中后期,随着炎性反应的抑制及修复功能的启动而表达降低。针刺百会和足三里穴后,早期患侧脑区IL-1β 的表达水平显著降低,炎性反应得到抑制。中后期,炎性因子增多,表达时间提前,可激活损伤-修复网络调节系统,促进损伤区神经细胞修复。ICAM-1 在损伤修复早期和中后期表达水平均显著增高,表明针刺可活化胶质细胞,增强细胞间联系,促进细胞增殖分化,恢复神经元功能。

图2 不同时间点大鼠患侧脑组织ICAM-1 免疫组化图(×100)Fig.2 Expression of ICAM-1 in the affected side brain tissues at different time points in the rats of each group.Immunohistochemical staining,×100.

模型组患侧脑区IL-1β 在缺血再灌注早期表达高于健侧,在中后期低于健侧,提示早期的细胞损伤与IL-1β 表达增高有关,中后期健侧脑组织通过启动内源性保护机制,产生缺氧耐受,从而减缓了缺血区的细胞损伤。健、患侧脑组织中ICAM-1 表达趋势相似,提示健侧脑组织在应激-损伤过程中可能发挥了协同替代作用。针刺组患侧脑区IL-1β 和ICAM-1 的表达水平低于健侧,表明电针可以抑制缺血区的炎症反应,并活化了健侧脑区相关的细胞信号。

本研究结果表明针刺可影响双侧脑组织中IL-1β 和ICAM-1 的表达,且患侧表达水平均低于健侧,提示针刺百会配伍足三里穴对脑缺血后机体产生的应激-损伤-修复信号链发挥了网络调节作用,针刺可通过降低患侧脑组织IL-1β 和ICAM-1 的表达,抑制炎症反应,改善脑缺血再灌注损伤,这可能是针刺治疗脑缺血性疾病的机制之一。

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