肝X受体α及Endoglin基因在妊娠期高血压疾病患者胎盘中的表达及意义

2013-08-28 03:16王晶东星杨彩霞王心尚丽新
解放军医学杂志 2013年8期
关键词:子痫胎盘引物

王晶,东星,杨彩霞,王心,尚丽新

妊娠期高血压疾病是妊娠期特有的疾病,是导致孕产妇和围生儿死亡的主要原因之一[1],目前其发病机制尚未完全阐明。肝X受体(LXRs)作为一种氧化型固醇激活的核受体,参与机体多种生理活动的调节,包括胆固醇代谢﹑脂肪代谢﹑糖代谢和炎症过程等[2-4]。Endoglin与滋养细胞的浸润功能密切相关。本研究采用Real-time PCR检测妊娠期高血压疾病患者胎盘组织中LXRα与Endoglin mRNA的相对表达量,从基因水平探讨二者与妊娠期高血压疾病发病的关系,以期为该病的防治提供新的思路。

1 材料与方法

1.1 研究对象 选取2010年8月-2011年4月在北京军区总医院产科住院分娩的妊娠期高血压疾病患者44例作为妊娠高血压疾病组,年龄29.5±3.2岁,孕龄262.1±13.9d。其中妊娠期高血压患者15例,轻度子痫前期患者14例,重度子痫前期患者15例。妊娠期高血压疾病的诊断标准参照乐杰主编的《妇产科学(第7版)》[1]。选取同期正常晚期妊娠妇女16例作为对照组,年龄28.6±3.9岁,孕龄264.3±14.6d。两组孕妇均为单胎,孕前无原发性高血压﹑糖尿病﹑慢性肾炎﹑甲状腺功能亢进症﹑肝炎及结核等急慢性病史,无烟酒等不良嗜好。两组孕妇均自愿参加本试验并签署知情同意书。两组孕妇年龄﹑孕龄﹑孕次及分娩方式之间比较差异无统计学意义(P>0.05)。

1.2 方法

1.2.1 标本采集 胎盘娩出后,立即剪取脐带对侧胎盘组织约300mg,剪成约1cm×1cm×1cm大小,装入冻存管中,投入液氮过夜后转入-80℃低温冰箱保存,以备RNA提取。

1.2.2 胎盘组织LXRα及Endoglin mRNA表达检测

1.2.2.1 RNA提取与反转录 按照大连宝生物工程有限公司Trizol总RNA提取试剂说明提取RNA。用紫外分光光度计及琼脂糖凝胶电泳检测所获RNA的完整性﹑纯度和含量。RNA置-80℃保存备用。按以下条件进行反转录:30℃ 5min,42℃ 60min,99℃ 5min,5℃ 5min。反应体系为20μl。

1.2.2.2 Real-time PCR LXRα上游引物5'-TGGAGACATCTCGGAGGTAC-3',下游引物5'-GCAATGAG CAAGGCAAACT-3';Endoglin上游引物5'-TAGCCCT GCGTCCCAAGA-3',下游引物5'-CGATGAGGAAGG CACCAAA-3'。采用SYBR Green荧光染料法进行Real-time PCR扩增。反应体系为20μl,包括1×Real Master Mix,1×SYBR Green,上﹑下游引物各1μl(5pmol)及1μl模板。以GAPDH作为内参照。反应条件为:94℃预变性5min;94℃ 30s﹑52℃ 30s﹑72℃ 40s,30个循环;72℃延伸10min。扩增后获得各组Ct值,绘制标准曲线。用基于ΔΔCt的方法进行相对定量分析,基因表达差异为–2ΔΔCt。ΔΔCt=ΔCt样品-ΔCt内参考。

1.3 统计学处理 采用SPSS 13.0软件进行统计分析,组间比较采用单因素方差分析,进一步两两比较采用SNK-q检验。P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 胎盘组织中LXRα及Endoglin的熔解曲线 胎盘组织中LXRα及Endoglin熔解曲线见图1,横坐标为温度,纵坐标为荧光强度,结果显示二者均有单一的产物峰。

图1 LXRα及Endoglin的熔解曲线Fig.1 Melting curve of LXRα (A) and Endoglin (B)

2.2 Real-time PCR产物电泳结果 经2%琼脂糖凝胶电泳检测,LXRα及Endoglin在正常孕妇﹑妊娠期高血压疾病患者和阳性对照组均出现与预期大小一致的片段,阴性对照没有出现任何条带(图2)。

2.3 胎盘组织中LXRα及Endoglin mRNA的表达单因素方差分析显示,妊娠期高血压疾病组孕妇胎盘组织中LXRα及Endoglin mRNA相对表达量与对照组比较明显增高,差异有统计学意义(P<0.05)。进一步两两比较显示,重度子痫前期组﹑轻度子痫前期组LXRα及Endoglin mRNA相对表达量明显高于对照组,且重度子痫前期组明显高于轻度子痫前期组,差异有统计学意义(P<0.05),而妊娠期高血压组与对照组比较差异无统计学意义(P>0.05,图3)。

图2 各组胎盘组织中LXRα及Endoglin的PCR产物电泳结果Fig.2 PCR products of LXRα and Endoglin in placenta from four groups (Gel electrophoresis)

图3 各组胎盘组织中LXRα及Endoglin mRNA的相对表达量Fig.3 Relative expression of LXRα and Endoglin mRNA in placenta tissue of four groups

3 讨 论

3.1 LXRα与妊娠期高血压疾病 LXRs是孤儿核受体家族成员,研究证实其与胎盘组织中脂肪酸的转运和代谢有密切关系,并可抑制胎盘滋养细胞分泌HCG,在人类胎盘中发挥重要作用[5]。

Plosch等[6]研究发现LXRα及其目标基因ATP结合盒转运子A1(ABCA1)在人类胎盘组织中呈高表达,其表达水平受低氧的调节,该调节机制失衡是导致子痫前期患者胎盘缺血的原因之一。本研究结果显示,妊娠期高血压疾病组胎盘组织LXRα mRNA表达明显高于对照组,其中轻度子痫前期组明显高于对照组,重度子痫前期组明显高于轻度子痫前期组,推测LXRα表达水平升高与子痫前期的发病及病情进展有关。LXRα能增加血浆甘油三酯(TG)生成[7],是动脉粥样硬化发生的独立危险因素。子痫前期患者胎盘组织中LXRα高表达可能会导致子宫螺旋动脉发生粥样硬化,使胎盘血流灌注减少,从而引发子痫前期的一系列症状。LXRα的激活剂可提高巨噬细胞肿瘤坏死因子(TNF)mRNA的表达水平,TNF诱导血管内皮细胞产生前列腺素和内皮素,导致血管收缩和血压升高[8]。LXR特异性配体GW3965能够剂量依赖性地抑制血管内皮细胞EA.hy926中内皮素1(ET-1)的mRNA和蛋白表达,并且抑制ET-1启动子的转录活性,从而起到降压的作用[9]。

3.2 Endoglin与妊娠期高血压疾病 Endoglin基因位于人染色体9q34,是一种同型二聚体(TGF-β1和TGF-β3的复合受体)跨膜糖蛋白,主要表达于人类内皮细胞表面和足月胎盘合体滋养层细胞表面。研究发现,在胎盘及胎盘血管快速发育期,Endoglin表达增强,但持续维持在低水平,这有利于正常胎盘的形成和胚胎的发育。

本研究发现,妊娠期高血压疾病组胎盘组织中Endoglin mRNA表达量明显高于对照组,且轻﹑重度子痫前期组均明显高于对照组,提示胎盘组织中Endoglin水平与妊娠期高血压疾病的发病及病情发展有关,与Gu等[10]的研究结果一致。有研究证实,缺氧可以诱导孕鼠胎盘及循环中Endoglin表达增加,且增高的Endoglin与孕鼠高血压密切相关[11],而胎盘组织中Endoglin表达上调可抑制TGF-β调控的促细胞凋亡作用,影响胎盘血管发育和重塑[12],从而影响滋养细胞的浸润功能,引起胎盘浅着床,参与妊娠期高血压疾病的发病。Endoglin与TGF-β1结合,通过不同途径使一氧化氮(NO)生成减少,导致血管收缩,外周血管阻力增加,血压升高[13]。此外,Endoglin可抑制滋养细胞中基质金属蛋白酶2(MMP-2)和MMP-9的表达,从而使滋养细胞降解细胞外基质的能力减低,侵袭能力下降,引起妊娠高血压疾病的一系列症状[14]。

3.3 LXRα及Endoglin的相关性研究 Henry-Berger等[15]研究发现,LXRα可上调胎盘组织中Endoglin的表达,继而阻断TGF-β/Endoglin信号途径,导致血管内皮细胞屏障受损,引起细胞水肿及蛋白尿。

总之,本研究结果显示胎盘组织中LXRα及Endoglin mRNA表达水平增高与妊娠期高血压疾病的发生及发展密切相关,但其参与子痫前期病理生理过程的具体机制还需进一步探讨。检测并调控胎盘组织中LXRα及Endoglin的表达水平对于防治妊娠期高血压疾病可能具有一定的临床意义。

[1] Le J. Obstetrics and gynecology[M]. 7th ed. Beijing: People's Medical Publishing House, 2008. 92-99. [乐杰. 妇产科学[M]. 7版. 北京: 人民卫生出版社, 2008. 92-99.]

[2] Qi YJ, Xu MJ, Yu Q. The expression and meaning of liver X receptor in obstructive sleep apnea-hypopnea syndrome patients[J]. Chin J Pract Inter Med, 2009, 29(7): 632-634. [亓永杰, 胥美娟, 余勤. 肝X受体在阻塞性睡眠呼吸暂停低通气综合征的表达及意义[J]. 中国实用内科杂志, 2009, 29(7):632-634.]

[3] Geyeregger R, Zeyda M, Stulnig TM. Liver X receptors in cardiovascular and metabolic disease[J]. Cell Mol Life Sci, 2006,63(5): 524-539.

[4] Zhu J, Wang SL. Liver X receptors and glycolipid metabolism disorder[J]. Acta Acad Med CPAPF, 2009, 18(7): 654-657. [朱静, 王素莉. 肝X受体与糖脂代谢紊乱[J]. 武警医学院学报,2009, 18(7): 654-657.]

[5] Weedon-Fekjaer MS, Dalen KT, Sollas K, et al. Activation of LXR increases acyl-CoA synthetase activity through direct regulation of ACSL3 in human placentaltrophoblast cells[J]. J Lipid Res,2010, 51(7): 1886-1896.

[6] Plosch T, Gellhaus A, Vanstraten EM, et al. The liver X receptor(LXR) and its target gene ABCA1 are regulated upon low oxygen in human trophoblast cells: a reason for alterations in preeclampsia[J]? Placenta, 2010, 31(10): 910-918.

[7] Chen J, Zheng RD, Xu CR, et al. Expression and significance of liver X receptor-alpha in nonalcoholic fatty liver disease in rats[J]. Zhonghua Shi Yan He Lin Chuang Bing Du Xue Za Zhi,2009, 23(4): 265-268.

[8] Landis MS,Patel HV, Capone JP. Oxysterol activations of liver X receptor and 9-cis-retinoic acid promote sequential steps in the synthesis and secretion of tumor necrosis factor-α from human monocytes[J]. J Biol Chem, 2002, 277(7): 4713-4721.

[9] Gao M, Su DM, Chao F, et al. Regulation of endothelin-1 expression of by liver X receptor in vascular endothelial EA.hy926 Cells[J]. J Med Mol Biol, 2008, 5 (6): 480-483. [高敏, 苏冬梅, 晁帆, 等. 肝X受体对血管内皮细胞EA.hy926内皮素1表达的调节作用[J]. 医学分子生物学杂志, 2008, 5(6):480-483.]

[10] Gu Y, Lewis DF, Wang Y. Placental productions and expressions of soluble endoglin, soluble fms-like tyrosine kinase receptor-1,and placental growth factor in normal and preeclamptic pregnancies[J]. J Clin Endocriol Metab, 2008, 93(1): 260-266.

[11] Gilbert JS, Gilbert SA, Arany M, et al. Hypertension produced by placental ischemia in pregnant rats is associated with increased soluble Endoglin expression[J]. Hypertension, 2009, 53(2):399-403.

[12] Levine RJ, Lam C, Qian C, et al. Soluble endoglin and other circulating antiangiogenic factors in preeclampsia[J]. N Engl J Med, 2006, 355(10): 922-1005.

[13] Sandrim VC, Palei AC, Metzger IF, et al. Nitricoxide formation is inversely related to serum levels of antiangiogenic factors soluble Fms-like tyrosine kinase-1 and soluble endoglin in preeclampsia[J]. Hypertension, 2008, 52(2): 402-407.

[14] Dong W, Xu QX, Han YH, et al. Inhibitory effects of soluble endoglin on invasive ability of cultured cytotrophoblasts of first trimester of pregnancy[J]. Acta Physiologica Sinica, 2011,63(3): 267-271. [董微, 许群星, 韩玉环, 等. 可溶性endoglin减弱人早孕细胞滋养细胞的浸润功能[J]. 生理学报, 2011,63(3): 267-271.]

[15] Henry-Berger J, Mouzat K, Baron S, et al. Endoglin (CD105)expression is regulated by the liver X receptor alpha (NR1H3) in human trophoblast cell line JAR[J]. Biol Reprod, 2008, 78(6):968-975.

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