顺铂联合氟西汀对肺癌伴抑郁小鼠干预的研究

2015-02-05 07:31李密辉吴晓魏凯林燕华魏颖孙婧罗清莉刘宝君董竞成
中国实验动物学报 2015年3期
关键词:氟西汀单药皮质醇

李密辉,吴晓,魏凯,林燕华,魏颖,孙婧,罗清莉,刘宝君,董竞成

(复旦大学附属华山医院,上海 200040)

肿瘤疾病作为一个重大的生活应激事件对患者心理有着很大的影响。有研究表明,肿瘤患者抑郁发病率为15% ~29%,是正常人患病率的3 ~5倍[1]。并且肿瘤治疗本身会增加患者患抑郁症的风险[2]。情感应激可降低肿瘤患者的生活质量、影响治疗效果并且会增加致死率[3]。研究显示,抑郁平均会使肿瘤患者生存期下降10% ~20%左右,一项为期17年的前瞻性研究结果表明,癌症的死亡率和抑郁情绪密切相关,高度抑郁者的死亡率是非抑郁者的2 倍[4]。因此,肿瘤与抑郁相伴发生有着密切的病理生理关系。

本研究通过建立小鼠肺癌伴抑郁模型,使用抗抑郁药物氟西汀联合化疗药顺铂对其进行干预,通过观察抑郁及肿瘤相关指标的改善情况,评价其疗效并探讨其作用的内在机制。

1 材料和方法

1.1 材料

SPF 级C57BL/6J 小鼠(简称“C57 小鼠”)40只,雄性,7 周龄,体重20 ~24 g,由中国科学院上海实验动物中心提供【SCXK(沪)2012-0002】。SPF 级CD1 小鼠30 只,雄性,9 ~10月龄退役种鼠,体重35~40 g,由北京维通利华实验动物技术有限公司提供【SCXK(京)2012-0036】。动物饲养于复旦大学药学院实验动物中心【SYXK(沪)2010-0099】;Lewis肺癌(Lewis lung cancer,LLC)细胞株惠赠于复旦大学附属中山医院;小鼠鼠笼带孔有机塑料挡板;社交接触旷场(42 cm × 42 cm × 42 cm);Noldus 动物行为学视频跟踪系统(Ethovision XT8.5,复旦大学上海医学院脑科研究院提供);皮质醇试剂盒:德国LDN 公司产品;IL-6 试剂盒美国R&D 公司产品;抗VEGE 抗体英国Abcam 产品;抗NF-κB 抗体美国CST 产品;盐酸氟西汀胶囊:苏州礼来制药有限公司产品;注射用顺铂:山东齐鲁制药有限公司产品。

1.2 小鼠社交应激性抑郁及肿瘤模型的建立

社交应激小鼠均采取单笼饲养,造模方法参考文献[5-6],首次应激开始前将攻击性较强的CD1 小鼠放置于透明挡板一侧24 h;将C57 小鼠放置CD1同侧社交应激4 ~5 min,之后将C57 放置于透明挡板另一侧,使之能观察到CD1 并能嗅到对方气味,相处24 h 后,开始下一轮应激;连续应激10 d,10 d之中CD1 小鼠位置不变,C57 小鼠每天变换鼠笼,使之不遇到同一只CD1 小鼠,应激结束后进行社交接触行为学实验。(2)肿瘤组小鼠均在社交应激结束后于右前肢腋后侧皮下接种2 ×106个LLC 细胞。

1.3 实验分组及处理

1.3.1 动物分组

将40 只C57 小鼠随机分为正常对照组(正常组,10 只);肺癌伴抑郁模型组(模型组,10 只);模型+顺铂组(单药组,10 只);模型+顺铂+氟西汀组(双药组,10 只)。正常组小鼠正常饲养;模型组应激结束后接种LLC 细胞,生理盐水灌胃0.3 mL/d,共14 d,种瘤后每3 天1 次腹腔注射生理盐水每次0.2 mL,共4 次;单药组社交应激结束后接种LLC 细胞,生理盐水灌胃0.3 mL/d,共14 d,种瘤后每3 天1 次腹腔注射顺铂2 mg/kg,共4 次;双药组社交应激结束后接种LLC 细胞,氟西汀20 mg/kg 灌胃,共14 d,种瘤后每3 天1 次腹腔注射顺铂2 mg/kg,共4 次。正常组小鼠5 只每笼,接受社交应激小鼠单笼饲养,自由进食饲料与水,室温20 ~25℃,相对湿度50% ~70%,光暗周期12 h。

1.3.2 小鼠行为学观察

10 d 社交应激结束后,采用社交接触实验对小鼠行为学进行评价,实验分为两个150 s,第一个150 s 期间CD1 小鼠不在旷场之内,将C57 小鼠放置于社交接触旷场中,旷场一侧为透明有孔有机玻璃围墙;中间间隔30 s,在30 s 内将C57 小鼠从旷场转移到饲养鼠笼内,同时将未与该C57 小鼠有社交应激接触的CD1 小鼠放入到围墙内,同时将C57再次放入到社交旷场内,记录下一个150 s 内C57小鼠在旷场内的运动轨迹[5]。

1.3.3 血清标本收集

接种肿瘤第15 天,所有小鼠眼眶动脉采血,4℃静置2 h 后,3000 r/min,4℃离心15min,上清液-80℃保存,ELISA 方法检测血清中皮质醇及IL-6 水平,按照试剂盒说明书进行检测。

1.3.4 RT-PCR 方法检测海马组织中脑源性神经营养因子(brain derived neurotropic factor,BDNF)mRNA 表达

取血后将小鼠置于冰上,颈后部开颅,分离海马组织,迅速投放入液氮中,实验结束后放入-80℃冰箱冻存待测。用Trizol 试剂盒对海马组织中总RNA进行提取,将提取出的mRNA 进行逆转录,合成cDNA 模板,以cDNA 为模板进行PCR 扩增。引物序列,BDNF 上游引物:5’GAG GTC TGA CGA CGA CAT CAC 3’,下游引物:5’GCT CCA AAG GCA CTT GAC TG 3’;β-actin 上游引物:5’CCT CTA TGC CAA CAC AGT 3’;下游引物:5’AGC CAC CAA TCC ACA CAG 3’。总反应体系为20 UI,反应过程为:95℃5 min;95℃5 s;60℃30 s(40 个循环),以β-actin 为内参,进行吸光度比值分析,以此代表目的基因的表达水平。

1.3.5 免疫组织化学方法检测肿瘤组织中NF-κB与VEGF 表达

小心剥离皮下肿瘤组织并称重,将其置于4%多聚甲醛中进行固定,用石蜡包埋切片,一抗4℃孵育过夜,二抗37℃孵育1.5 h,DBA 显色3 ~5 min,镜下观察,阳性产物呈棕黄色或黄色。

1.4 统计学分析

实验数据采用SPSS 17.0 软件进行数据分析,资料以均数±标准误表示(sˉx);符合正态分布和方差齐性,资料采用单因素方差分析(ANOVA),两两比较采用LSD 检验,方差不齐采用秩和检验,P <0.05 为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 社交应激行为学评价

末次社交应激结束24 h 后对各组小鼠进行社交接触旷场实验,CD1 小鼠未出现时各组小鼠在社交区活动时间差异无显著性(P >0.05);CD1 小鼠出现后,接受过社交应激三组小鼠在社交区活动时间明显低于正常组(P <0.05);各组自身比较,正常组小鼠在CD1 出现后表现出更为活跃的社交水平,在社交区停留时间明显延长,而接受社交应激的各组小鼠则表现出社交回避行为,在社交区停留时间较CD1 未出现时明显下降(P <0.05)。见图1。

图1 各组小鼠在CD1 小鼠出现前后在社交区停留时间Fig.1 The stay time in the interaction zone of mice of all groups before and after CD1 mice presence

2.2 血清皮质醇及IL-6 水平变化

与正常组比较,模型组血清皮质醇及IL-6 水平明显升高(P <0.05);单药组血清皮质醇及IL-6 水平与模型组相比有降低趋势但差异无显著性(P >0.05);而双药组与模型组比较皮质醇及IL-6 水平明显下降,差异有显著性(P >0.05)。见图2。

2.3 海马组织BDNF mRNA 表达

图2 各组小鼠血清皮质醇与IL-6 水平比较Fig.2 The levels of serum cortisol and IL-6 in the mice of all groups

使用RT-PCR 方法检测海马组织中BDNF mRNA 表达,与正常组比较,模型组小鼠海马组织BDNF mRNA 表达水平下降(P <0.05);单药组与模型组比较差异无显著性(P >0.05);双药组与模型组和单药组比较BDNF mRNA 表达明显升高(P <0.05)。见图3。

2.4 各组皮下肿瘤重量与模型组比较

单药组和双药组皮下肿瘤重量明显降低,差异具有显著性(P <0.05);单药组与双药组相比差异无显著性(P >0.05)。见图4。

图3 各组小鼠海马BDNF mRNA 表达水平Fig.3 BDNF mRNA expression levels in the hippocampus of mice in all groups

2.5 肿瘤组织中NF-κB 及VEGF 蛋白表达

与模型组相比,单药组和双药组肿瘤组织中NFκB 及VEGF 表达水平明显降低(P <0.01);单药组与双药组比较差异无显著性(P >0.05)。见图5,6。

图4 各组小鼠皮下肿瘤重量Fig.4 Tumor weight of the mice in all groups

图5 各组皮下肿瘤组织NF-ΚB 与VEGF 免疫组化平均吸光度值Fig.5 The IOD of NF-ΚB and VEGF in tumor tissues determined by immunohistochemical staining.

3 讨论

抑郁与肿瘤关系密切,许多临床研究发现应激、慢性抑郁、社会支持和心理因素可能影响肿瘤的发生及进展,其主要机制可能为各种应激性因素激活下丘脑-垂体-肾上腺轴和交感神经系统两条信号级联途径启动应激反应[7]。本实验通过社交失败应激诱导C57 小鼠建立社交应激性抑郁模型,该模型被认为是应激诱导抑郁相关情绪较为可靠的模型,与人类抑郁症的若干行为学和神经生物学改变具有相似性[8]。通过社交接触旷场实验评价小鼠行为学,发现遭受社交应激失败的各组小鼠比正常组小鼠在社交区停留时间明显缩短,这种社交回避行为在CD1 小鼠出现以后更加明显,而正常组小鼠则表现出更为活跃的社交水平,实验结果表明重复性的暴露于社交失败应激因素之下,会导致抑郁样表型,表现为社交回避行为[9]。研究表明,下丘脑-垂体-肾上腺轴(HPA 轴)在抑郁症的发病机制中发挥着重要作用[10]。在抑郁患者当中,HPA 轴被激活,肾上腺分泌大量糖皮质激素,导致血液中糖皮质激素水平升高。亦有研究报道急性应激能够使小鼠体内糖皮质激素升高[11]。而糖皮质激素可使某些肿瘤细胞抵抗凋亡并且下调机体的免疫反应,这可能有助于肿瘤发生转移[12]。我课题组前期研究亦证实给予社交应激能够促进肿瘤生长[13]。研究发现IL-6 与抑郁和肿瘤的进展有较为明确的相关性,肿瘤伴抑郁患者血清IL-6 水平较不伴抑郁肿瘤患者明显升高[14,15]。本实验中肺癌伴抑郁模型组小鼠血清皮质醇及IL-6 水平较正常组明显升高,也印证这一观点。经氟西汀和顺铂药物治疗的双药组皮质醇和IL-6 水平较模型组则明显下降,单药组皮质醇及IL-6 水平经治疗后也有下降但较模型组差异不显著。说明抗抑郁与抗肿瘤治疗均能降低血清中炎症因子IL-6 水平,但单纯抗肿瘤治疗不能改善HPA轴紊乱状态,经氟西汀治疗后,皮质醇及IL-6 水平明显降低。临床研究发现氟西汀能够降低重度抑郁患者血清皮质醇水平,调节HPA 轴紊乱状态,且多种抗抑郁药物具有抗炎作用,可改善抑郁患者血清IL-6 升高状况[16,17]。

图6 各组小鼠肿瘤组织NF-κB 与VEGF 蛋白表达(×200)Fig.6 Expression of NF-κB and VEGF in the tumor tissue of mice in all groups (×200)

BDNF 在抑郁症发病机制及治疗过程中有着重要的作用,本实验中模型组小鼠海马BDNF mRNA表达与正常组比较明显降低,经氟西汀治疗后双药组小鼠BDNF mRNA 表达较模型组和单药组明显升高,差异有显著性。抑郁症发病学说之一就是脑内BDNF 的缺乏,而脑内BDNF 水平升高可能会起到抗抑郁效果[18,19]。研究发现抑郁模型小鼠存在海马区神经元凋亡伴BDNF 表达水平下降,而外源性BDNF 微量注入大鼠中脑、海马和侧脑室可有效缓解抑郁症大鼠的类抑郁行为[20,21]。本实验表明口服氟西汀能够增强抑郁小鼠海马组织BDNF mRNA表达,从而发挥其抗抑郁作用,而单纯抗肿瘤治疗则并无此作用。

单药组及双药组小鼠皮下肿瘤重量、肿瘤组织NF-κB 及VEGF 表达与模型组比较明显降低,双药组与单药组比较有下降趋势但差异无显著性,表明氟西汀抗抑郁治疗并未对肿瘤的发展起到明显抑制作用。NF-κB 是一类普遍存在的转录调节因子,研究发现其可通过多种细胞因子的转录而发挥抗凋亡、促进细胞增殖、血管发生、肿瘤转移的作用[22]。VEGF 是目前已知的作用最强的促血管形成因子之一,它可以通过促进血管生成从而参与肺癌浸润与转移。而NF-κB 与VEGF 有着密切的联系,在肿瘤血管形成中NF-κB 起着核心作用,它通过上调VEGF 的表达促进肿瘤血管的形成[23]。而NF-κB与抑郁症也有着密切的联系,文献报道慢性社交孤立导致的氧化或硝化应激可能是通过激活NF-κB及增加诱导型一氧化氮合成酶表达实现的,文献报道大多数抗抑郁药物有着抗炎效果[24,25]。本实验设想NF-κB 可能为抑郁与肿瘤相互作用的交互点之一,是否氟西汀可以通过抑制NF-κB 产生抗炎效果从而对肿瘤有抑制作用,然而通过氟西汀与顺铂联合治疗与顺铂单药治疗进行对比,双药组与单药组相比肿瘤重量及相关蛋白表达虽有一定的下降趋势,但无统计学差异。分析可能为抗抑郁药物治疗时间较短,并且抑郁可通过多途径、多靶点促进肿瘤发生、发展与转移[7]。氟西汀为选择性5-羟色胺再摄取抑制剂,能够增加突触间隙5-羟色胺水平从而产生抑郁作用,而具体可能机理有增加海马BDNF水平、促进神经类固醇合成等[26]。

综上所述,本研究未发现氟西汀对NF-κB 有明显的抑制作用,因此可能并未起到对肿瘤抑制作用。但服用氟西汀小鼠抑郁相关指标有明显改善,因此临床肿瘤伴抑郁病人服用氟西汀能够起到抗抑郁改善生活质量的目的。但抗抑郁药物能否对肿瘤有抑制作用,还需更多基础及临床试验进行验证。

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