丁香酚对西番莲保鲜效果及品质的影响

巴良杰，孙雁征，罗冬兰，陈建业

（1.贵阳学院食品科学与工程学院，贵州 贵阳 550005；2.贵阳学院生物与环境工程学院，贵州 贵阳 550005；3.华南农业大学园艺学院，广东 广州 510642）

西番莲（Passiflora caeruleaL.）又名百香果，为西番莲科西番莲属草质藤本植物的果实[1]。西番莲果实营养丰富，富含多种必需氨基酸和维生素[2]，具有抗炎和抗癌的特性，并且可以降低心血管疾病、癌症和代谢性疾病发生的风险[3-4]，深受人们的喜爱。然而，西番莲是典型的呼吸跃变型水果，细胞呼吸作用强，其采后生理品质下降迅速，特别容易萎缩、腐烂，极大地影响其果质和口感，造成严重的经济损失[5-8]。因此，研究西番莲采后贮藏保鲜技术，保持西番莲采后贮藏品质，对今后西番莲产业发展有着重要的现实意义。

丁香酚作为一种天然防腐剂，具有高效的抑菌保鲜作用，在农产品采后贮藏方面越来越受认可，且美国食品和药物管理局将丁香酚认定为“公认安全使用物质”，允许其在食品中使用[9]。丁香酚能够抑制采后苹果病害发生，降低贮藏期苹果的腐烂率、呼吸速率和褐变指数的上升，以及抑制可溶性固性物含量、可滴定酸和硬度的下降，延缓采后苹果的生理衰老，有利于保持苹果的品质和风味[10]。黄琦辉等研究发现25 μL/L丁香酚处理可显著延缓青茄果实冷害的发生，降低冷害指数和质量损失率，抑制丙二醛含量的上升，保持较高的可溶性糖、总酚含量，研究结果表明丁香酚熏蒸处理对青茄采后冷害的调控具有潜在的应用价值[11]。钟业俊等的研究表明茶树油、丁香酚和柠檬醛可抑制荔枝果实腐败，延缓果皮衰老和果肉VC含量的降低，对保持荔枝果实的感官品质也具有积极作用[12]。赵治兵等发现褪黑素结合丁香酚处理（0.5 mmol/L的褪黑素＋50 μL/L的丁香酚）能有效降低镇远红桃腐烂率和呼吸速率，延缓硬度、可溶性固形物含量、可滴定酸含量和总酚含量的下降，有效维持超氧化物歧化酶（superoxide dismutase，SOD）活性、抗坏血酸过氧化物酶（ascorbate peroxidase，APX）活性和多酚氧化酶活性[13]。此外，还有研究表明丁香酚处理可以有效降低蓝莓贮藏期果实表面的微生物的数量，推迟果实腐烂的发生时间，提高过氧化相关酶活性，延缓果实营养物质的降解与消耗，保持较好的果实贮藏品质，对蓝莓具有一定的防腐保鲜效果[14-15]。但目前尚鲜见丁香酚对西番莲贮藏特性影响的报道。

因此，本研究以西番莲为试材，从活性氧代谢的角度分析丁香酚浸泡处理对西番莲采后贮藏品质、呼吸速率、内源抗氧化物质含量的影响，以期为西番莲的采后化学保鲜应用提供技术参考。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂

新鲜西番莲（果实八成熟时采摘）购自贵州省安龙县万峰湖镇西番莲种植基地，采后立刻运回实验室。挑选大小均匀、无明显机械损伤的西番莲作为实验材料。

丁香酚、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、邻苯二酚、过氧化氢、硼砂、聚乙烯吡咯烷酮、乙二胺四乙酸二钠、抗坏血酸 上海源叶生物科技有限公司；蔗糖、蒽酮、三氯乙酸、硫代巴比妥酸、氢氧化钠 国药集团化学试剂公司；无水乙醇 天津市富余精细化工公司。

1.2 仪器与设备

TA.XT Plus物性测定仪 英国SMS公司；TGL-16A台式高速冷冻离心机 长沙平凡仪器仪表有限公司；PAL-1型迷你数显折射计 日本Atago公司；UV-2550紫外分光光度计 日本Shimadzu公司。

1.3 方法

1.3.1 西番莲果实的前处理

新鲜健康西番莲果实随机分成两组，每组690 个果实，用于随后的处理。

丁香酚浸泡处理：根据前期预实验的结果，选用0.30 mg/mL质量浓度的丁香酚对西番莲进行浸泡处理[16]。将挑选、清洗的西番莲果实随机分为丁香酚处理组和对照组，丁香酚处理组浸泡在0.30 mg/mL质量浓度的丁香酚溶液中10 min；对照组浸泡在蒸馏水中10 min。取出处理好的西番莲，风干表面水分，用0.015 mm厚的聚乙烯薄膜袋密封包装。在（20±1）℃、相对湿度80%下贮藏25 d，从贮藏0 d开始每5 d每组取样3 袋，每袋30 个果实，用于测定西番莲果实的色泽、呼吸速率、硬度等指标；另外，每组取样3 袋，每袋50 个果实，用于测定西番莲果实好果率和皱缩指数，剩余果实用液氮速冻，－80 ℃保存，供后续相关指标使用，每个处理3 次重复。

1.3.2 好果率、皱缩指数、质量损失率的测定

参照罗冬兰等[17]的方法，每5 d记录没有腐烂和病斑的果实数量，记为S，按公式（1）计算好果率。

果实皱缩指数参照徐雪莹等[18]的方法测定，其中，皱缩度按等级可分为5 个等级：0级：无皱缩；1级：0%～25%皱缩；2级：25%～50%皱缩；3级：50%～75%皱缩；4级：75%～100%皱缩，按公式（2）计算。

果实质量损失率测定参照Jiang Xuanjing等[19]的方法，按公式（3）计算。

式中：m0、m1分别为西番莲贮藏前、后的质量/g。

1.3.3 色泽的测定

外果皮色泽的测定按照Pongener等[8]的方法测定。

1.3.4 呼吸速率、硬度的测定

果实呼吸速率的测定参照陈亚婷等[20]的方法并略作改动。将西番莲置于干燥器中，静置于室温下2 h，使用便携式分析仪记录干燥器内CO2的体积分数，将样品称量后记录质量（m/g），按公式（4）计算呼吸速率。

式中：V1表示密闭干燥器总体积/L；V2表示西番莲果实体积/L；φ表示便携式分析仪记录干燥器内CO2的体积分数/%；m表示西番莲果实质量/g；t表示测定时间/h。

果实硬度的测定参照吴萌萌等[21]的方法，并略作改动，采用英国TA.XT Plus物性测定仪测定，利用P/2柱头对果实进行穿刺测试，测试参数：穿刺深度为6 mm，测前速率和测后速率均为1 mm/s，测中速率为3 mm/s。

1.3.5 西番莲果皮细胞膜透性和果实MDA含量的测定

果皮细胞膜透性的测定参照袁芳等[22]的方法，以相对电导率表征细胞膜透性，相对电导率是衡量细胞膜透性的重要指标，其值越大，表示电解质的渗漏量越多，细胞膜受害程度越严重。

参照Wei Meilin等[23]的方法进行MDA含量的测定。MDA含量的计算如式（5）所示。

式中：OD450nm、OD532nm、OD600nm分别为反应混合物在450、532、600 nm波长处的光密度值；V为样品提取液总体积/mL；Vs为测定时所取样品提取液体积/mL；m为样品质量/g。

1.3.6 可溶性糖质量分数、固酸比、可溶性蛋白含量的测定

运用蒽酮比色法测定可溶性糖质量分数。

固酸比是可溶性固形物与可滴定酸的比值。其中，可溶性固形物使用PAL-1迷你数显折射仪测定；可滴定酸含量采用氢氧化钠滴定法[24]测定。

可溶性蛋白含量采用考马斯亮蓝法[25]测定。

1.3.7 总酚、类黄酮、抗坏血酸和还原型谷胱甘肽的测定

总酚含量采用福林-酚法[26]测定。

类黄酮含量采用Wang Hui等[27]的方法测定。

抗坏血酸含量测定参照考陈莲等[28]的方法。

还原型谷胱甘肽（reduced glutathione，GSH）含量测定参照Qian Chunlu等[29]的方法。

1.3.8 抗氧化能力的测定

果肉中1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH）自由基清除能力参照Jiang Wen等[30]的方法测定。

羟自由基清除能力参考Tai Linyu等[31]的方法测定。

2,2’-联氮-双-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸（2,2’-azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)，ABTS）阳离子自由基清除能力参照罗堾子等[32]的方法测定。

铁离子还原能力的测定参照Jing Pu等[33]方法。

超氧阴离子自由基（O2－·）产生速率和过氧化氢（H2O2）含量的测定参照吕静祎等[34]的方法。

1.3.9 抗氧化酶活力的测定

过氧化氢酶（catalase，CAT）活力的测定参照Cakmak等[35]的方法，以每分钟反应体系在240 nm波长处吸光度减少0.01为1 个酶活力单位（U）。

SOD活力的测定参照万军等[36]的方法，在325 nm波长条件下，以每分钟抑制邻苯三酚自氧化率达50%的酶量为1 个酶活力单位（U）。

APX活力的测定参照Nakano等[37]的方法，以每分钟反应体系在290 nm波长处吸光度减少0.01为1 个酶活力单位（U）。

1.4 数据处理与分析

采用SPSS 26.0软件对数据进行单因素方差分析，以P＜0.05表示差异显著，并用Origin 2021软件制图。

2 结果与分析

2.1 丁香酚处理对西番莲果实品质的影响

如图1A所示，贮藏初期，对照组和丁香酚处理组西番莲果实均呈现青绿色，随着贮藏时间的延长，两组果实逐渐成熟，果皮颜色发生变化，转变为深红色。贮藏至15 d时，对照组西番莲果实表面出现褐斑，且逐渐扩大，而丁香酚处理组果实表面光滑，未出现褐斑现象。由图1B可知，贮藏至25 d时，丁香酚处理组果实相对完好，好果率为83.33%，而对照组西番莲果实好果率仅为62.67%，且贮藏15、20、25 d时，丁香酚处理组与对照组差异极显著（P＜0.01）。由图1C可知，贮藏20 d时，对照组的皱缩指数为0.83，是丁香酚处理组1.56 倍，丁香酚处理组的果实皱缩指数显著低于对照组（P＜0.01）。如图1D所示，对照组果实的质量损失率在贮藏10 d时为0.78%，丁香酚处理组果实的质量损失率在贮藏10 d时为0.63%，对照组果实的质量损失率是丁香酚处理组的1.23 倍；与对照组相比，丁香酚处理降低了西番莲的质量损失率。综上，丁香酚处理较好地维持了西番莲贮藏期果实的感官品质。

图1 丁香酚处理对西番莲果实品质（A）、好果率（B）、皱缩指数（C）、质量损失率（D）的影响Fig. 1 Effect of eugenol treatment on the quality (A), marketable fruit rate (B), shrinkage index (C), and mass loss rate (D) of passion fruit

2.2 丁香酚处理对西番莲果实色差的影响

如图2A所示，两组西番莲果实的L*值呈下降的趋势，在贮藏15 d时，丁香酚处理的西番莲果实L*值为65.58，而对照组的西番莲果实L*值为58.71，此时，两组西番莲果实L*值之间有极显著差异（P＜0.01）。如图2B所示，贮藏15 d时，对照组的a*值为16.68，丁香酚处理组a*值为12.13，对照组的a*值是丁香酚处理组1.37 倍。如图2C所示，在贮藏5～25 d内，对照组果实b*值显著低于丁香酚处理组（P＜0.05，P＜0.01）。

图2 丁香酚处理对西番莲果实L*值（A）、a*值（B）和b*值（C）的影响Fig. 2 Effect of eugenol treatment on L* (A), a* (B) and b* (C) values of passion fruit

2.3 丁香酚处理对西番莲果实呼吸速率与硬度的影响

如图3A所示，对照组和丁香酚处理组果实的呼吸速率总体均呈现先升后降的趋势，对照组在贮藏5 d时出现呼吸高峰，而丁香酚处理组果实的呼吸高峰出现较对照组晚，推迟至第10天。在贮藏至15 d时，丁香酚处理组果实的呼吸速率为8.428 mg/（kg·h），对照组呼吸速率为10.214 mg/（kg·h）。如图3B所示，贮藏5 d时，对照组果实的硬度为18.57 kg/cm2，而丁香酚处理组果实的硬度为20.71 kg/cm2，丁香酚处理与对照组存在极显著差异（P＜0.01）；贮藏15 d时，丁香酚处理组果实硬度为14.49 kg/cm2，是对照组的1.08 倍。综上，丁香酚处理组可保持贮藏期西番莲果实的硬度。

图3 丁香酚处理对西番莲果实呼吸速率（A）和硬度（B）的影响Fig. 3 Effects of eugenol treatment on respiratory intensity (A) and firmness (B) of passion fruit

2.4 丁香酚处理对西番莲果皮相对电导率和果肉丙二醛含量的影响

如图4A所示，在10～20 d内，对照组的相对电导率急速上升，在20 d时其相对电导率达到49.88%，是丁香酚处理组的1.17 倍，组间差异极显著（P＜0.01）。如图4B所示，在15～25 d内，对照组果肉MDA含量急速上升，贮藏至15 d时，其果肉MDA含量比贮藏0 d时增加了66.67%。进一步比较发现，在贮藏20～25 d内，丁香酚处理的西番莲果肉MDA含量极显著低于对照组（P＜0.01）。

图4 丁香酚处理对西番莲果皮相对电导率（A）、果肉丙二醛含量（B）的影响Fig. 4 Effect of eugenol treatment on relative electrical conductivity (A)in passion fruit peel and MDA content (B) in passion fruit pulp

2.5 丁香酚处理对西番莲可溶性糖质量分数、固酸比和可溶性蛋白含量的影响

由图5A可知，贮藏10 d时，丁香酚处理组果实的可溶性糖质量分数为22.77%，是对照组的1.10 倍，此时丁香酚处理组与对照组之间存在极显著差异（P＜0.01）。由图5B可知，贮藏20 d时，丁香酚处理组西番莲的固酸比为5.40，是对照组的1.05 倍。在贮藏5 d和15 d时，丁香酚处理组与对照组之间均存在极显著差异（P＜0.01）。由图5C可知，贮藏10 d后，对照组和丁香酚处理组果实可溶性蛋白含量均开始下降，但丁香酚处理组果实可溶性蛋白含量始终高于对照组。综上，采后丁香酚处理可以有效降低西番莲采后代谢活动，从而延缓果实的衰老进程。

图5 丁香酚处理对西番莲果实可溶性糖质量分数（A）、固酸比（B）和可溶性蛋白含量（C）的影响Fig. 5 Effect of eugenol treatment on soluble sugar content (A),solid/acid ratio (B) and soluble protein content (C) of passion fruit

2.6 丁香酚处理对西番莲总酚、类黄酮、抗坏血酸和GSH含量的影响

由图6A可以看出，在贮藏前期，西番莲果实的总酚不断累积，在10 d时出现峰值，此时，丁香酚处理组总酚含量为184.48 μg/g，而对照组总酚含量为117.17 μg/g，组间差异极显著（P＜0.01）；贮藏15 d后，丁香酚处理组和对照组总酚含量均开始下降，贮藏至25 d时，丁香酚处理组总酚含量为52.25 μg/g，对照组总酚含量为25.35 μg/g，丁香酚处理组总酚含量是对照组的2.06 倍。由此可知，丁香酚浸泡处理使西番莲果实总酚含量保持较高的水平。由图6B可以看出，贮藏期间，类黄酮相对含量随贮藏时间延长呈先上升后下降的趋势。在贮藏15 d时，丁香酚处理和对照组的类黄酮含量均达到峰值，分别为0.73 mg/g和0.48 mg/g，此时，丁香酚处理和对照组总酚含量有极显著差异（P＜0.01）；在贮藏15 d后，丁香酚处理和对照组的类黄酮含量均开始下降，贮藏至25 d时，丁香酚处理组的类黄酮含量为0.41 mg/g，对照组类黄酮含量为0.28 mg/g，丁香酚处理组类黄酮含量是对照组的1.46 倍。上述结果说明丁香酚浸泡处理使西番莲果实类黄酮含量保持较高的水平。由图6C可知，贮藏至15 d时，对照组果实抗坏血酸含量为18.60 mg/100 g，而丁香酚处理组为20.70 mg/100 g，两组果实抗坏血酸含量有极显著差异（P＜0.01）。由图6D可知，贮藏至5 d时，对照组GSH含量为0.29 mmol/g，而丁香酚处理组GSH含量为0.32 mmol/g，丁香酚处理组GSH含量极显著高于对照组（P＜0.01）。贮藏15 d后对照组和丁香酚处理组西番莲果实的GSH含量开始下降，但丁香酚处理组西番莲果实的GSH含量始终高于对照组。

图6 丁香酚处理对西番莲果实总酚（A）、类黄酮（B）、抗坏血酸（C）、GSH（D）含量的影响Fig. 6 Effect of eugenol treatment on the contents of total phenols (A),flavonoids (B), ascorbic acid (C), and reduced glutathione (D) in passion fruit

2.7 丁香酚处理对西番莲抗氧化能力的影响

由图7A可知，丁香酚处理组的西番莲果实DPPH自由基清除能力在5 d时是对照组的1.10 倍；进一步比较发现，在贮藏5、15 d时，两组果实DPPH自由基清除能力有极显著差异（P＜0.01）。由图7B可知，贮藏期间丁香酚处理组与对照组西番莲果实的羟自由基清除能力整体呈先上升后下降的趋势，西番莲果实羟自由基清除能力在贮藏5 d时出现峰值，此后，羟自由基清除能力开始下降。丁香酚处理能较好维持西番莲果实羟自由基清除能力；在贮藏20 d、25 d时丁香酚处理组羟自由基清除能力极显著高于对照组（P＜0.01）。由图7C可以看出，在贮藏10 d时，丁香酚处理组的西番莲果实ABTS阳离子自由基的清除能力为50.07%，是对照组的1.07 倍。进一步比较发现，在贮藏10、15、20 d时，两组ABTS阳离子自由基清除能力有极显著差异（P＜0.01）。

图7 丁香酚处理对西番莲DPPH自由基清除能力（A）、羟自由基清除能力（B）、ABTS阳离子自由基清除能力（C）、铁离子还原能力（D）、O－2·产生速率（E）、H2O2含量（F）的影响Fig. 7 Effect of eugenol treatment on DPPH (A), hydroxyl (B) and ABTS radical cation (C) scavenging capacity, ferric reducing power (D),superoxide anion generation rate (E), and hydrogen peroxide content (F)of passion fruit

由图7D可知，在贮藏15 d和25 d时，丁香酚处理组的西番莲果实铁离子还原能力分别为424.79 μmol/L和263.98 μmol/L，均极显著高于对照组（P＜0.01）。由图7E可知，丁香酚处理组的果实O－2·产生速率在贮藏10、15、20 d时极显著低于对照组（P＜0.01）。由图7F可知，在整个贮藏期间，丁香酚处理组西番莲果实中H2O2的含量比对照组低。贮藏10 d时，丁香酚处理组的西番莲果实中H2O2含量为0.48 mmol/g，是对照组西番莲果实的62.33%。第20天时，丁香酚处理组西番莲果实中H2O2的含量为1.24 μmol/g，是对照组西番莲果实的68.50%。贮藏25 d时，丁香酚处理组西番莲果实中H2O2的含量为0.57 μmol/g，是对照组西番莲果实的71.5%。以上结果表明，丁香酚处理可以有效抑制西番莲果实中H2O2的累积。

2.8 丁香酚处理对西番莲抗氧化酶活性的影响

如图8A所示，贮藏10 d时，丁香酚处理组西番莲果实CAT活力为339.12 U/g，是对照组的2.58 倍。在贮藏10～25 d期间，丁香酚处理组西番莲果实CAT活力极显著高于对照组（P＜0.01）。如图8B所示，两组西番莲果实的SOD活力在贮藏10～25 d时存在差异极显著（P＜0.01），其中，在贮藏10 d时，丁香酚处理组西番莲果实SOD活力为24.28 U/g，是对照组的1.51 倍。如图8C所示，整个贮藏期间，对照组西番莲果实的APX活力始终低于丁香酚处理组，并且在贮藏10、20 d和25 d时差异极显著（P＜0.01）。

2.9 相关性分析

如图9A所示，对照组中，皱缩指数与质量损失、a*值、相对电导率、丙二醛含量、ABTS阳离子自由基清除能力呈极显著正相关（P＜0.01），与好果率、硬度、L*值、b*值、铁离子还原能力呈极显著负相关（P＜0.01）。

图9 对照组（A）与丁香酚处理组（B）各项指标的相关性分析Fig. 9 Correlation analysis among various indicators in control (A)and eugenol treatment (B) groups

如图9B所示，在丁香酚处理组中，西番莲好果率与L*值、硬度和抗坏血酸含量呈极显著正相关（P＜0.01），与皱缩指数、质量损失率、a*值和O2－·产生速率呈极显著负相关（P＜0.01）；抗坏血酸含量与好果率、L*值、硬度、铁离子还原能力呈极显著正相关P＜0.01），与皱缩指数、质量损失率、a*值、相对电导率、ABTS阳离子自由基清除能力和O2－·产生速率呈极显著负相关（P＜0.01）。

3 讨 论

西番莲采摘后会出现强烈的呼吸作用，导致其迅速变褐和腐烂，这也是其货架期短的主要原因。本研究结果显示，使用0.30 mg/mL的丁香酚处理可以抑制采后西番莲的呼吸作用，延缓其变褐的过程，同时保持其营养品质，从而延长其货架期。这与张莉会等[38]所进行的研究结果相一致，他们使用丁香酚处理抑制桑葚的腐败变质，提高了桑葚的贮藏稳定性。

丁香酚具有较好的杀菌和抗氧化作用，在果蔬保鲜中已成为研究热点。付振喜[39]使用0.3%的丁香精油处理草莓，发现其可以保持草莓果实的品质并延缓其衰老，可能的原因是，丁香精油处理一定程度上能够减少草莓果实中VC含量的损失、减缓可溶性固形物含量和总酸含量的降低速度、降低草莓呼吸速率，从而达到延长保鲜期的目的；曾慧[40]的研究结果表明，丁香提取液可以有效降低脐橙的质量损失率和腐烂率，延缓脐橙果实总酸的消耗，保持较高的过氧化物酶活性，减少MDA的积累，说明丁香提取液可作为天然保鲜剂应用于脐橙采后贮藏保鲜；宋义忠等[41]研究表明，丁香提取物能有效抑制花椰菜贮藏中的变褐现象、减少花椰菜的质量损失，使花椰菜保鲜后仍具有很好的商品价值；孔秋莲等[42]的研究表明，丁香提取物处理能有效降低甜椒果实的质量损失率和腐烂率，更好地保持果实中还原糖和总可溶性固形物含量；综上，丁香提取物能够延缓采后花椰菜和甜椒的衰老过程。赖毅东[43]发现，丁香提取液可抑制霜疫霉菌在荔枝果皮上的生长，且丁香提取液能显著抑制采后青梨的硬度变化和失水率，有助于维持采后青梨的品质；潘磊庆等[44]发现丁香精油可有效抑制根霉、灰霉的生长，降低樱桃番茄果实的腐烂指数，并可诱导樱桃番茄防御活性升高；李鹏霞等[10]发现丁香酚能够抑制采后苹果主要病害，抑制贮藏期果实的腐烂率、呼吸速率和褐变指数的上升，以及可溶性固性物含量、可滴定酸和硬度的下降，延缓采后苹果的衰老，有利于保持苹果的品质和风味；关文强等[45]发现，葡萄、桃等果蔬采收后的主要病原菌可以被丁香精油显著抑制。本实验结果表明，0.30 mg/mL丁香酚处理可提高西番莲果实抗氧化酶活性，并对西番莲保鲜具有一定的增效作用。丁香酚能够抑制采后西番莲质量损失率的上升，可滴定酸及VC含量的下降，维持采后西番莲果实的硬度及颜色，有利于保持西番莲果实的品质。

MDA作为膜脂过氧化的最终产物，其含量能够直接反映膜脂损伤的程度[46]。本研究中，西番莲果实皱缩指数、细胞膜透性和MDA含量在贮藏过程中都随着时间的延长而升高；相关性分析结果表明，MDA含量与皱缩指数和细胞膜透性在整个贮藏期间呈显著正相关；在贮藏中后期，0.30 mg/mL丁香酚处理显著抑制了西番莲MDA含量的生成，同时延缓O2－·产生速率（图7），说明丁香酚处理可以通过延缓活性氧的积累，减少果实组织中MDA的产生，减轻细胞膜脂过氧化反应，保持较好的细胞膜完整性，这与李磊[47]对葡萄果实的研究结果相似。

在植物系统中，SOD、CAT和APX等抗氧化酶能够清除O2－·、促进H2O2的酶解[48-49]。本研究结果表明，丁香酚处理能够提高采后西番莲CAT、APX、SOD活性，延缓西番莲果肉中活性氧自由基含量的升高，同时抑制西番莲果肉中抗坏血酸含量的下降。赖毅东[43]的研究表明，丁香提取物能够抑制采后青梨果肉中VC含量的降解；赵治兵等[13]研究发现丁香酚处理可提高采后红桃果实抗氧化相关酶的活性；孟祥轩[50]的研究表明，21.5%丁香酚处理能提高葡萄抗氧化酶活性。本研究结论与上述研究结论相似。

4 结 论

丁香酚浸泡处理降低了西番莲果实采后呼吸速率、质量损失率、皱缩指数、细胞膜透性，抑制了丙二醛、O2－·和过氧化氢的积累，减缓了西番莲组织内可溶性糖、可溶性蛋白、总酚和类黄酮含量的下降，维持了较高的抗坏血酸和GSH等内源抗氧化物质含量以及DPPH自由基、羟自由基、ABTS阳离子自由基清除能力和铁离子还原能力，提高了CAT、SOD、APX等抗氧化酶活性。综上，丁香酚处理可以维持采后西番莲较高的品质及抗氧化活性，从而延缓果实的衰老，延长贮藏期。

丁香酚可从天然植物中提取，方法简单易行，成本较低，其防腐保鲜效果显著，用于西番莲贮藏切实可行。本研究可为将丁香酚开发成为商业化应用的天然保鲜剂提供参考，以期实现取代化学杀菌剂、解决食品安全问题、提升西番莲市场竞争力。