山羊源无枝菌酸棒状杆菌(Corynebacterium amycolatum)的分离鉴定与耐药性分析

2022-07-14 09:24李富祥洪琼花王金萍杨仕标宋建领高华峰云南省畜牧兽医科学院云南省热带亚热带动物病毒病重点实验室云南昆明6504云南省畜牧兽医科学院云南省畜禽遗传资源保护和种质创新工程实验室云南昆明6504
中国兽医学报 2022年6期
关键词:琼脂红霉素引物

李富祥,洪琼花,朱 沛,王金萍,杨仕标,宋建领,高华峰* (.云南省畜牧兽医科学院 云南省热带亚热带动物病毒病重点实验室,云南 昆明 6504;.云南省畜牧兽医科学院 云南省畜禽遗传资源保护和种质创新工程实验室,云南 昆明 6504)

无枝菌酸棒状杆菌(Corynebacteriumamycolatum)是1988年英国COLLINS等[1]命名的一个种,属于棒状杆菌属的一个成员。C.amycolatum是一种重要的条件致病菌[2],能引起人的阴道炎[3]、心内膜炎[4]、败血症[5]、腹膜炎[6]、关节炎[7],乳腺炎[8]和角膜溃疡[9]等多种疾病。到目前为止,仅见美国[4]、英国[7]、德国[5]、中国[3]和土耳其[2]等十多个国家有C.amycolatum分离鉴定的报道,但绝大部分分离株均来自于人,来自动物分离株的报道罕见[9-10]。

2021年8月,云南省弥勒县某规模化羊场发生一种慢性腹泻疾病,头孢类抗生素治疗有一定的效果,但停药后容易再次发生腹泻,该病的发病率为2.0%,病死率为10.0%,给养殖场造成较大的经济损失。为对该病例进行实验室诊断,本研究采集10份腹泻病羊的直肠棉拭子样品进行细菌分离鉴定,结果分离到10株革兰阳性多形杆菌,分离株经形态学和16S rDNA基因同源性比对和遗传进化分析鉴定为C.amycolatum。本研究首次从羊分离到C.amycolatum,并分析分离株的耐药性和耐药基因特征,为羊C.amycolatum感染的预防和控制提供基础数据。

1 材料与方法

1.1 主要试剂哥伦比亚琼脂、麦康凯琼脂购自北京奥博星生物技术有限公司;细菌基因组DNA提取试剂盒购自天根生化科技(北京)有限公司;2×EasyTaq PCR SuperMix和Trans 2K DNA Marker购自北京全式金生物技术有限公司;青霉素、氨苄西林、阿莫西林克拉维酸、头孢噻吩、头孢呋辛、链霉素、卡那霉素、庆大霉素、红霉素、氯霉素、阿米卡星、诺氟沙星、四环素和磺胺甲恶唑药敏纸片购自北京天坛药物生物技术开发公司;氟苯尼考药敏纸片购自英国OXOID公司。

1.2 引物设计细菌16S rDNA上下游引物27F(A)/1492R(T)参照文献[11]设计;细菌耐药基因引物参照文献[12]设计;引物均由北京擎科生物科技有限公司昆明分公司合成。

1.3 细菌分离将10份直肠棉拭子样品分别划线接种哥伦比亚琼脂平板,37℃、5.0% CO2培养24 h,挑取优势菌落进行纯培养,将分离株革兰染色镜检,观察菌体形态。同时将分离株接种麦康凯琼脂平板,37℃、5.0% CO2培养24 h,观察生长特性。

1.4 16S rDNA基因测序用细菌基因组DNA提取试剂盒分别提取10株分离株基因组DNA作为PCR模板,采用27F(A)/1492R(T)引物PCR扩增16S rDNA基因,扩增产物经1.2%琼脂糖凝胶电泳鉴定正确后,送北京擎科生物科技有限公司昆明分公司测序,将序列提交GenBank数据库获得基因收录号。

1.5 16S rDNA基因BLAST比对鉴定分别将10株分离株16S rDNA基因在NCBI数据中进行BLAST比对鉴定。

1.6 16S rDNA基因遗传进化分析利用MegAli-gn软件分析分离株与其16S rDNA基因遗传进化相关细菌种的同源性,利用MEGA 4.0.2软件构建16S rDNA基因(1 368 bp)系统进化树(Neighbor-Joining进化树),bootstrap values值设定为1 000,选择棒状杆菌属模式菌株C.diphtheriaeNCTC 11397T(LN831026)作为进化树的外群,对分离株进行遗传进化分析鉴定。

1.7 药敏试验按照王刚等[13]介绍的方法和 CLSI20013推荐的Kirby-Bauer方法进行药敏试验,分析分离株对15种抗菌药物的耐药性。

1.8 耐药基因PCR检测按照杨守深等[14]介绍的煮沸法分别提取分离株的DNA作为PCR模板。20.0 μL PCR反应体系:ddH2O 7.6 μL,2×Easy Taq PCR SuperMix 10.0 μL,上、下游引物(25.0 μmol/L)各0.2 μL,DNA模板2.0 μL。PCR反应条件:94℃预变性3 min;94℃ 30 s、各引物退火温度退火30 s,72℃延伸30 s,35个循环;72℃延伸5 min。PCR产物进行1.2%琼脂糖凝胶电泳,观察耐药基因检测结果。

2 结果

2.1 细菌分离10份直肠棉拭子样品分别划线接种哥伦比亚琼脂平板,培养过夜后,均长出大量灰白色圆形、凸起、边缘整齐、表面干燥的小菌落。挑取优势菌落进行纯培养,共分离到10株细菌,编号依次为YN21083~YN210812(即YN21083~YN210-89、YN210810~YN210812),分离株在麦康凯琼脂上均不生长。分离株革兰染色均呈阳性多形杆菌,菌体一端膨大呈棒状,2个菌体常呈V字形排列,其中分离株YN21083的革兰染色形态见图1。

图1 分离株YN21083的革兰染色形态 (×1 000)

2.2 16S rDNA基因BLAST比对鉴定10株分离株PCR产物琼脂糖凝胶电泳均得到约为1 500 bp的条带,与预期相符,PCR产物鉴定正确。将YN21083~YN210812分离株测序得到的16S rDNA基因序列提交GenBank数据库,得到基因登录号依次为MZ841808~MZ841817。BLAST比对结果显示:10株分离株与C.amycolatum德国分离株FDAARGOS_991的同源性最高,其同源性在99.3%~100.0%之间,将10株分离株初步鉴定为C.amycolatum。

2.3 16S rDNA基因遗传进化分析MegAlign同源性比对结果显示,10株分离株与10株C.amycolatum参考株之间的同源性为97.2%~100.0%,与C.amycolatum模式菌株ATCC 49368T之间的同源性为98.3%~99.2%,10株分离株之间的同源性为99.0%~100.0%。系统进化树显示,10株分离株与10株C.amycolatum参考株形成同一个进化分支,4株乳酸棒状杆菌(C.lactis)形成另一个进化分支(图2),进一步将10株分离株鉴定为C.amycolatum。

图2 分离株16S rDNA基因进化分析

2.4 药敏试验药敏试验结果显示,10株分离株均对卡那霉素和磺胺甲恶唑耐药;对庆大霉素和氯霉素中度耐药;对青霉素、氨苄西林、阿莫西林克拉维酸、头孢噻吩、头孢呋辛、阿米卡星和氟苯尼考敏感,可作为治疗的首选药物。4株分离株(YN21087、YN21088、YN21089和YN210810)对链霉素耐药;2株分离株(YN21085和YN21086)对诺氟沙星耐药;9株分离株(YN21086除外)对红霉素耐药。

2.5 耐药基因PCR检测23种耐药基因检测结果显示,10株分离株共检测到8种耐药基因aadA1、aadA2、tetA、tetM、qnrS、Sul1、Sul2和Sul3,其检出率分别为30.0%,30.0%,100.0%,60.0%,60.0%,100.0%,10.0%,20.0%(表1);均未检测到blaTEM、blaCTXM、blaCIT、blaEBC、aacA4、tetB、tetG、tetL、ermA、ermB、ermC、qnrB、qnrC、qnrD和floR耐药基因。

表1 分离株耐药基因检测结果

3 讨论

C.amycolatum是近年来才被认识到的一种重要的条件致病菌,常引起人的乳房炎、阴道炎、腹膜炎、角膜溃疡、耳炎等多种疾病。动物C.amycolatum感染的报道十分少见,目前仅见猪(尿道感染)、犬(耳炎)和奶牛(乳房炎)感染的报道[9-10,15],未见其他动物C.amycolatum感染的报道。本研究分别从弥勒县某规模化羊场3个圈舍的10只腹泻山羊直肠棉拭子样品各分离到1株C.amycolatum,共分离到10株C.amycolatum,首次证实了羊C.amycolatum感染的存在,并研究分离株的遗传进化、耐药性和耐药基因特征,为羊C.amycolatum感染的实验室诊断、预防和控制具有重要意义。

国内外C.amycolatum耐药性研究中,青霉素和红霉素是研究最多的2种抗菌药物。本研究中的10株分离株均为多重耐药菌株,其耐药种数为3~5种。其中,青霉素耐药率为0%,与CHEN等[3]报道的中国人源分离株耐药率一致,而与DRAGOMIRESCU等[16]报道的罗马尼亚分离株(7株)耐药率100.0%,ZALAS等[17]报道的波兰分离株(70株)耐药率71.4%和RIEGEL等[18]报道的法国分离株(54株)耐药率56.0%均存在很大的差异。10株分离株红霉素耐药率为90.0%,显著高于YAGUE等[19]报道的西班牙分离株(57株)耐药率52.3%和BALCI等[20]报道的土耳其分离株(4株)耐药率75.0%。10株分离株磺胺甲恶唑耐药率为100.0%,与CHEN等[3]报道的中国人源分离株耐药率一致,而远远高于NEEMUCHWALA等[20]报道的加拿大分离株(190株)耐药率33.2%。耐药性研究表明,中国分离株耐药性与国外分离株存在很大差异,可能与不同国家抗菌药物应用频率有关。青霉素、氨苄西林、阿莫西林克拉维酸、头孢噻吩、头孢呋辛和阿米卡星可作为我国治疗C.amycolatum感染的首选药物。

国内外C.amycolatum耐药基因检测的研究报道很少,仅见喹诺酮类耐药基因gryA[21]和红霉素类耐药基因ermB和ermX[22]的检测报道。本研究对10株分离株β-内酰胺类(blaTEM、blaCTXM、blaCIT和blaEBC)、氨基糖苷类(aadA1、aadA2和aacA4)、四环素类(tetA、tetB、tetG、tetL和tetM)、大环内酯类(ermA、ermB和ermC)、喹诺酮类(qnrB、qnrC、qnrD和qnrS)、磺胺类(Sul1、Sul2和Sul3)和氯霉素类(floR)共23种耐药基因进行检测,共检出8种耐药基因(表1)。10株分离株ermA、ermB和ermC耐药基因检出率为0%,其中ermB检出率与ORTIZ-PÉREZ等[22]报道的西班牙分离株(66株)检出率一致,而本研究中的10株分离株红霉素耐药率高达90.0%,因此红霉素耐药性与ermA、ermB和ermC耐药基因无相关性。10株分离株sul1耐药基因检出率为100.0%,并且磺胺甲恶唑耐药率也为100.0%,因此磺胺甲恶唑耐药性与sul1耐药基因具有很好的相关性。10株分离株aadA1和aadA2检出率仅为30.0%,而卡那霉素耐药率高达100.0%,因此卡那霉素耐药性与aadA1和aadA2无相关性。仅3株分离株YN21087、YN21088和YN21089检出aadA2,并且只有这3株分离株对链霉素耐药,因此链霉素耐药性与aadA2耐药基因具有很好的相关性。10株分离株tetA和tetM检出率分别高达100.0%和60.0%,而四环素耐药率为0%,因此四环素耐药性与tetA和tetM无相关性。

目前,国内外均无从人和动物腹泻病例样品中分离到C.amycolatum的研究报道,本研究从弥勒县某规模化羊场3个圈舍的10只腹泻山羊的直肠棉拭子样品中各分离到1株C.amycolatum,共分离到10株C.amycolatum。而同圈舍的10只健康山羊直肠棉拭子均未分离到C.amycolatum,因此,推测C.amycolatum是引起山羊腹泻的一种重要病原,应引起重视,其致病性和致病机制有待下一步深入研究。

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